1.1適用范圍
本指南介紹百邁客動(dòng)物類(lèi)組織&核酸樣品的送樣要求及制備方法。采集送樣前請(qǐng)?jiān)敿?xì)閱讀。信息單中樣本名稱(chēng)、組織部位必須與實(shí)物相符,避免因信息單與實(shí)物不符導(dǎo)致反復(fù)核對(duì),影響樣本質(zhì)量、錄入周期,導(dǎo)致提取核酸質(zhì)量不滿(mǎn)足建庫(kù)測(cè)序要求,實(shí)驗(yàn)周期過(guò)長(zhǎng)等
1.2提取風(fēng)險(xiǎn)提示
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、樣本制備、樣本交接、提取方法與操作、以及環(huán)境等因素息息相關(guān),尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣的要求更高。組織提取時(shí)可能受到上下游處理操作的影響,因此較難保證單次提取滿(mǎn)足質(zhì)量要求,望老師知悉理解,并做好組織備份。為保障獲得相對(duì)較高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)老師務(wù)必按照以下指導(dǎo)原則準(zhǔn)備樣本。對(duì)于珍貴樣本或微量樣本,建議自行提取
注意:未在表格出現(xiàn)的物種,請(qǐng)單獨(dú)溝通。送樣量結(jié)果展示為滿(mǎn)足提取一次的量,如樣品經(jīng)過(guò)特殊處理或樣本狀態(tài)異常有幾率影響得率,為了保證您的實(shí)驗(yàn)可以順利進(jìn)行,請(qǐng)酌情增加送樣量
2.1常規(guī)植物組織送樣要求
物種 | 舉例說(shuō)明 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 組織部位(g) | |||||
葉子 | 根 | 莖 | 花 | 果實(shí) | 種子 | ||||
普通禾本科植物 | 水稻 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | 2 | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
玉米、小麥等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – | |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 1 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
豆科草本植物 | 大豆、苜蓿、落花生等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.3 | 0.3 | |||
芭蕉科植物 | 香蕉、芭蕉、旅人蕉等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
松科植物 | 馬尾松、云杉、濕地松等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
瑞香科植物 | 狼毒、結(jié)香等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
薯類(lèi)植物植物 | 木薯、番薯、土豆、山藥等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
其他落葉喬木 | 楊樹(shù)、梧桐、懸鈴木等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
水果類(lèi) | 葡萄、檸檬、龍眼等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
薔薇科 | 桃、蘋(píng)果、梨、草莓等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.2 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 1 | 0.5 |
物種 | 舉例說(shuō)明 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 組織部位(g) | |||||
葉子 | 根 | 莖 | 花 | 果實(shí) | 種子 | ||||
中藥 | 人參、三七、何首烏等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.3 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.3 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
仙人掌科 | 火龍果、仙人掌(取外皮)等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | 0.3 | 0.5 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | 0.3 | 0.5 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.5 | 0.3 | 0.5 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.5 | 0.3 | 0.5 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.5 | 0.3 | 0.5 | 0.15 | 0.5 | 0.5 | |||
蒺藜科 | 白刺 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
SLAF | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
獼猴桃科 | 獼猴桃 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.3 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
大型真菌 | 蘑菇,靈芝,木耳等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.3 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.3 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | – | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | – | – | – | – | – | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
真核小RNA | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
殼斗科 | 板栗、櫟樹(shù)、 青岡等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
槭樹(shù)科 | 雞爪槭,元寶槭,糖槭等 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | – | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | – | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | – | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | – | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | – | 0.3 | |||
錦葵科 | 蜀葵,秋葵 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.5 | 0.3 | |||
石斛 | 石斛(干樣、炮制) | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | 2 | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
真核小RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.15 | 0.3 | 0.3 | |||
藻類(lèi) | 海帶、紫菜、微藻、海藻、抑食金球藻 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 | – | – | – | – | – |
外顯子 | 0.5 | – | – | – | – | – | |||
甲基化 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | – | – | – | – | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1.5 | – | – | – | – | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | – | – | – | – | – | |||
Ultra Long ONT | – | – | – | – | – | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.2 | 0.2 | 0.2 | – | – | – | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.2 | 0.2 | 0.2 | – | – | – | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | – | – | – | |||
真核小RNA | 0.2 | 0.2 | 0.2 | – | – | – | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.2 | 0.2 | 0.2 | – | – | – |
1)核酸送樣需要提供相關(guān)檢測(cè)結(jié)果,DNA類(lèi)核酸可提供以下檢測(cè)手段中的一種或多種檢測(cè)結(jié)果: Qubit、 NanoDrop、 AGE,同時(shí)請(qǐng)采取適當(dāng)?shù)募兓椒?,以避免多糖、多酚、蛋白或者核酸酶?duì)DNA樣品的污染,并詳細(xì)注明溶解DNA所使用的溶解液類(lèi)型
2)如果您開(kāi)展的實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目為miRNA的相關(guān)實(shí)驗(yàn),并且提供的是總RNA的樣本,請(qǐng)務(wù)必確認(rèn)您采用的總RNA的提取方法保留了小RNA ( 包括miRNA),提取試劑盒型號(hào)備注送樣信息單中
3.1二代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | SLAF | 重測(cè)序 | 甲基化 | 外顯子 | FFPE | PCR產(chǎn)物 | PCR-free | chip-seq |
濃度ng/ul | 5 | 1 | 5 | 6 | 14 | 0.6 | 40 | 1 |
總量ug | 1.5 | 0.1 | 1 | 0.1 | 0.25 | 0.1 | 1 | 0.06 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 15 | 20 | 15 | 15 | 15 |
3.2三代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | ONT動(dòng)植物基因組 | PB動(dòng)植物基因組 | 超長(zhǎng) |
濃度ng/ul | 40 | 100 | 50 | 50 |
總量ug | 4 | 10 | 15 | 15 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 50 |
3.3RNA類(lèi)送樣量要求
1)針對(duì)核酸有雜質(zhì)、污染、粘稠、顏色等情況,需要過(guò)柱純化后送樣或者酌情增加送樣量
2)核酸樣品建議使用1.5ml、2ml EP管裝載樣品,其他保存管容易破裂且不利于保存樣品和后續(xù)實(shí)驗(yàn)的開(kāi)展
3)為了防止樣品污染和混淆,禁止使用96孔板和深孔板裝載樣品
4)用乙醇沉淀的樣品由于運(yùn)輸中會(huì)有少量乙醇揮發(fā),建議將樣品管蓋用封口膜纏繞4-5圈
5)考慮到核酸可能存在含有雜質(zhì)、顏色等物質(zhì)導(dǎo)致會(huì)產(chǎn)生大量損失的風(fēng)險(xiǎn),為保證樣本一次檢測(cè)合格并節(jié)約寶貴的重送樣時(shí)間,送樣建議量是高于公司判定標(biāo)準(zhǔn)的,請(qǐng)?jiān)诤怂崃孔銐虻那疤嵯卤M量按照送樣建議來(lái)送樣
項(xiàng)目類(lèi)型 | 初檢結(jié)果(濃度、體積、純度) | 樣品狀態(tài) | ||
濃度(ng/ul) | 總量(ug) | 體積(ul) | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
二代轉(zhuǎn)錄組 | 20 | 1 | 15 | 正常 |
真核小RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
4.1常規(guī)植物類(lèi)樣本(不含藻類(lèi))制備流程
由于老葉或其它組織DNA&RNA含量可能較低,而次生代謝物含量一般相對(duì)較高,因此,為降低DNA&RNA提取難度并減少污染物干擾,請(qǐng)盡量選擇健康、幼嫩的葉片組織;不建議選擇易帶有寄生或共生生物的組織,以及不易清洗和研磨的根、莖等組織致密的器官。另外藻類(lèi)組織中的水分會(huì)影響提取得率,取樣時(shí)需將組織樣中的水分吸干。建議在采集樣本之前,將樣本置于黑暗環(huán)境24-48小時(shí)后再制備樣本(停止光合作用,減少代謝干擾),新鮮組織樣采樣流程如下:
1)用清水將材料表面的灰塵及泥土沖洗干凈,吸干,再?gòu)闹参矬w上取下新鮮組織(注:如果是需要進(jìn)行處理,請(qǐng)?jiān)诨铙w上進(jìn)行處理后再取樣
2)如果組織體積較大,將組織剪切成 50-100 mg小塊,約黃豆大小的小塊,放入提前準(zhǔn)備好的凍存管中
3)處理好的組織樣本混合均勻后立即保存于提前標(biāo)記編號(hào)、液氮預(yù)冷的2 mL 或更大體積的旋蓋凍存管中,根據(jù)組織樣本量選擇核酸凍存管
4)液氮凍存前將樣品分割成 50~100 mg 左右的小塊,處理好的組織樣本混合均勻后保存于提前標(biāo)記編號(hào)、液氮預(yù)冷的2 mL 或更大體積的旋蓋凍存管中,根據(jù)組織樣本量選擇核酸凍存管
5)迅速置于液氮中冷凍 1~2 h,然后按照順序依次放入樣品盒中(不建議自封袋送樣),轉(zhuǎn)移至-80 °C長(zhǎng)期保存(禁止亂放,尤其是項(xiàng)目中樣品個(gè)數(shù)較多時(shí)),干冰運(yùn)輸
注:植物組織不建議使用組織保護(hù)液保存。對(duì)于一些需要?jiǎng)內(nèi)シN皮處理的,因樣品速凍后無(wú)法準(zhǔn)確剔除,如有需要?jiǎng)內(nèi)シN皮的老師須自行操作
4.2Ultra Long ONT類(lèi)植物樣本
4.2.1植物組織選取及取樣步驟
1)準(zhǔn)備剪刀、鑷子、錫箔紙,選取新鮮幼嫩的組織, 例如幼嫩的葉片(也可以是新長(zhǎng)出的幼嫩根尖)
2)除去枯萎的,損傷的部分,除去莖,葉柄和粗的葉脈
3)將組織清理干凈,可放在容器中用水沖洗,除去雜質(zhì)和其他殘余碎片
4)將清洗干凈的樣本倒在吸水紙上,再蓋上一張吸水紙用手輕輕壓幾次(注意不要太用力損傷 葉片),水盡可能除去
5)將葉片稱(chēng)量一下,每0.5g/管(推薦使用 50ml 離心管)裝好,標(biāo)注樣本名稱(chēng),日期,準(zhǔn)確重量
6)放入液氮快速冷凍 10min,轉(zhuǎn)入-80 °C 冰箱保存,干冰運(yùn)輸
7)葉片剪下后的稱(chēng)量等操作,請(qǐng)?jiān)?10min 內(nèi)完成,時(shí)間過(guò)長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致葉片失水不可用,部分地區(qū)氣溫較高失水更快,操作時(shí)間需更短
4.2.2注意事項(xiàng)與說(shuō)明
1)葉片要幼嫩的、新鮮的 、完整的(不要有損傷),可用手對(duì)比老葉和嫩葉的觸感,嫩葉的觸感非常柔軟
2)林木 、灌木類(lèi)的請(qǐng)根據(jù)生長(zhǎng)周期來(lái)確定采樣時(shí)間, 最好是發(fā)芽后長(zhǎng)出來(lái)的嫩葉
3)禾本科黃化苗 1-2 周,最好有專(zhuān)門(mén)的黃化經(jīng)驗(yàn),黃化太過(guò)會(huì)造成細(xì)胞核難提取 。如果不會(huì)黃化就送 1-2 周剛長(zhǎng)出來(lái)的葉片,具體生長(zhǎng)時(shí)間需根據(jù)植物的生長(zhǎng)狀態(tài)判斷
4)組培苗,不建議直接使用,盡量移植到土壤中培育出植株,取新長(zhǎng)出的幼嫩葉片,若使用組培苗送樣,請(qǐng)客戶(hù)多準(zhǔn)備備份樣本
5)送樣前請(qǐng)拍照記錄樣品狀態(tài)
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、采集方法及保存狀態(tài)、提取方法及操作、實(shí)驗(yàn)器材及環(huán)境等因素均有密不可分的聯(lián)系,尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣本的質(zhì)量、總量要求更高,望知悉及理解,并做好樣本備份。為了保障獲得高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)務(wù)必按照送樣手冊(cè)所規(guī)定的準(zhǔn)備樣本。對(duì)珍貴樣本或者微量樣本,建議自行提取
1)組織速凍時(shí)間:組織離體后,胞內(nèi)核酸便開(kāi)始降解,尤其是 RNA,故采集時(shí),目的組織離體后,需立即速凍,建議 3min 內(nèi)完成,越快越好。速凍時(shí)間過(guò)短會(huì)導(dǎo)致速凍不徹底,核酸有降解風(fēng)險(xiǎn)
2)組織送樣量:建議送樣量適用于 95%的物種組織,少部分組織因胞內(nèi)核酸量較低,需適當(dāng)增加送樣量,比如動(dòng)物皮膚、毛發(fā)等。請(qǐng)嚴(yán)格按照上方組織送樣量要求送樣,送樣量過(guò)少或過(guò)多均不利于提取實(shí)驗(yàn)。采樣量較少會(huì)導(dǎo)致提取的核酸總量、濃度不合格,采樣量過(guò)多反而會(huì)造成速凍不徹底、提取取樣困難、凍融降解等危險(xiǎn)
3)組織狀態(tài):不建議送組織狀態(tài)差或非生長(zhǎng)旺盛期樣品,核酸有一定幾率降解
4)組織保存管的選擇:所有組織樣品務(wù)必使用離心管或螺紋管保存,切勿直接裝入密封袋(低溫凍脆易破裂,導(dǎo)致樣品泄露,交叉污染)保存
5)組織樣品保存方法選擇:首選液氮速凍;沒(méi)有液氮條件的,可直接放入-80℃冰箱凍存。未使用液氮速凍或液氮速凍時(shí)間過(guò)短都有一定幾率導(dǎo)致核酸降解
6)組織送樣方式的選擇:干冰運(yùn)輸,且需要保證干冰的充足,冰袋和常溫送樣,有幾率導(dǎo)致核酸的降解。除RNA類(lèi)樣品可使用RNAlater保存送樣,其余產(chǎn)品均建議送速凍組織,不建議使用保護(hù)液送樣,化開(kāi)離心會(huì)有幾率導(dǎo)致核酸降解;不建議酒精送樣,固定不徹底,有一定幾率殘留核酸酶,降解核酸
7)凍融組織: 組織凍存后,一旦凍融,核酸降解概率大于 80%,幾乎不可能提取成功,此類(lèi)組織不建議送樣。請(qǐng)各位老師送樣前注意組織保存狀態(tài), 確保組織未發(fā)生過(guò)凍融情況
8)帶血組織:由于血液沒(méi)有專(zhuān)業(yè)的保護(hù)劑,去除不凈一起速凍送樣會(huì)影響組織的完整性
9)長(zhǎng)年保存的組織:保存時(shí)間超過(guò)一年的組織不建議送樣
10)組織分離要求:正常組織樣本中不能含有病變組織,而病變組織樣本中也不可以?shī)A帶有正常組織,提取實(shí)驗(yàn)時(shí)無(wú)法精確取樣,無(wú)法稱(chēng)重。組織量過(guò)多的不能全部取樣,只隨機(jī)選取適量組織提取
11)對(duì)于同一個(gè)組織樣品需要同時(shí)提取 DNA和 RNA 的,請(qǐng)務(wù)必分成兩管分批次送樣。樣本的特殊處理包括:鹽處理、溫度處理、藥物處理、病毒侵染、傷害處理、干旱處理等脅迫處理方式,不同程度的處理對(duì)樣本的核酸質(zhì)量會(huì)造成不同程度的影響,常見(jiàn)的會(huì)導(dǎo)致核酸 的降解或者得率降低。因此,經(jīng)過(guò)特殊處理的樣本,在送樣時(shí),務(wù)必請(qǐng)?jiān)跇颖拘畔沃羞M(jìn)行詳細(xì)的備注,以便盡量提高提取的成功率和避免樣本的浪費(fèi)
6.1樣本總量不足、濃度過(guò)低存在風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
6.2降解樣本風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
5)導(dǎo)致數(shù)據(jù)duplication比例高、隨機(jī)性差
6)導(dǎo)致Small RNA rRNA比例高,影響有效數(shù)據(jù),文庫(kù)片段異常
6.3蛋白或其他雜質(zhì)污染
1)可能影響Small RNA電泳分離,造成切膠不準(zhǔn),影響問(wèn)題質(zhì)量
2)可能影響RNA-seq磁珠分離導(dǎo)致建庫(kù)失敗,或即使達(dá)到上機(jī)要求也可能導(dǎo)致文庫(kù)隨機(jī)性差等問(wèn)題
3)文庫(kù)構(gòu)建失敗
4)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
6.4目標(biāo)RNA含量低
1)總RNA達(dá)到要求,但由于樣本特異性,small RNA含量低于正常樣本,導(dǎo)致建庫(kù)失敗
2)總RNA達(dá)到要求,但由于處理或組織部位的特異性,mRNA降解或含量低,導(dǎo)致建庫(kù)失敗或者測(cè)序數(shù)據(jù)中rRNA 數(shù)據(jù)比例高
]]>1.1適用范圍
本指南介紹百邁客動(dòng)物類(lèi)組織&核酸樣品的送樣要求及制備方法。采集送樣前請(qǐng)?jiān)敿?xì)閱讀。信息單中樣本名稱(chēng)、組織部位必須與實(shí)物相符,避免因信息單與實(shí)物不符導(dǎo)致反復(fù)核對(duì),影響樣本質(zhì)量、錄入周期,導(dǎo)致提取核酸質(zhì)量不滿(mǎn)足建庫(kù)測(cè)序要求,實(shí)驗(yàn)周期過(guò)長(zhǎng)等
1.2提取風(fēng)險(xiǎn)提示
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、樣本制備、樣本交接、提取方法與操作、以及環(huán)境等因素息息相關(guān),尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣的要求更高。組織提取時(shí)可能受到上下游處理操作的影響,因此較難保證單次提取滿(mǎn)足質(zhì)量要求,望老師知悉理解,并做好組織備份。為保障獲得相對(duì)較高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)老師務(wù)必按照以下指導(dǎo)原則準(zhǔn)備樣本。對(duì)于珍貴樣本或微量樣本,建議自行提取
注1:未在表格出現(xiàn)的物種,請(qǐng)單獨(dú)溝通。送樣量結(jié)果展示為滿(mǎn)足提取一次的量,如樣品經(jīng)過(guò)特殊處理或樣本狀態(tài)異常有幾率影響得率,為了保證您的實(shí)驗(yàn)可以順利進(jìn)行,請(qǐng)酌情增加送樣量
注2:由于骨骼含有大量鈣鹽和礦物質(zhì),細(xì)胞密度低,核酸含量較少;毛發(fā)暴露在外界環(huán)境,容易受到紫外線、溫度變化、微生物影響,導(dǎo)致核酸降解,毛干核酸含量低,毛囊周?chē)?xì)胞多難獲取,為了保證您實(shí)驗(yàn)的順利進(jìn)行,這兩個(gè)部位不建議送組織樣,建議自行提取
物種 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 組織部位(g/ml/個(gè)) | |||||||||
心臟 | 肝臟 | 脾臟 | 腎臟 | 腦 | 肌肉 | 腸道 | EDTA抗凝血液 | PAXgene管送樣血液 | 細(xì)胞 | |||
人 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 |
外顯子 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
甲基化 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 5*10e6 | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
真核小RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
鼠 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 |
外顯子 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
甲基化 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | 0.3 | – | 1*10e6 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.2 | 0.2 | 0.5 | – | 5*10e6 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 5*10e6 | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 5*10r6 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
真核小RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.5 | 10 | 3*10r6 |
物種 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 送樣量(g) |
皮膚 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 | ||
毛發(fā) | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 | ||
骨骼 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 |
1)核酸送樣需要提供相關(guān)檢測(cè)結(jié)果,DNA類(lèi)核酸可提供以下檢測(cè)手段中的一種或多種檢測(cè)結(jié)果: Qubit、 NanoDrop、 AGE,同時(shí)請(qǐng)采取適當(dāng)?shù)募兓椒?,以避免多糖、多酚、蛋白或者核酸酶?duì)DNA樣品的污染,并詳細(xì)注明溶解DNA所使用的溶解液類(lèi)型
2)如果您開(kāi)展的實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目為miRNA的相關(guān)實(shí)驗(yàn),并且提供的是總RNA的樣本,請(qǐng)務(wù)必確認(rèn)您采用的總RNA的提取方法保留了小RNA ( 包括miRNA),提取試劑盒型號(hào)備注送樣信息單中
3.1二代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | SLAF | 重測(cè)序 | 甲基化 | 外顯子 | FFPE | PCR產(chǎn)物 | PCR-free | chip-seq |
濃度ng/ul | 5 | 1 | 5 | 6 | 14 | 0.6 | 40 | 1 |
總量ug | 1.5 | 0.1 | 1 | 0.1 | 0.25 | 0.1 | 1 | 0.06 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 15 | 20 | 15 | 15 | 15 |
3.2三代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | ONT動(dòng)植物基因組 | PB動(dòng)植物基因組 | 超長(zhǎng) |
濃度ng/ul | 40 | 100 | 50 | 50 |
總量ug | 4 | 10 | 15 | 15 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 50 |
3.3RNA類(lèi)送樣量要求
1)針對(duì)核酸有雜質(zhì)、污染、粘稠、顏色等情況,需要過(guò)柱純化后送樣或者酌情增加送樣量
2)核酸樣品建議使用1.5ml、2ml EP管裝載樣品,其他保存管容易破裂且不利于保存樣品和后續(xù)實(shí)驗(yàn)的開(kāi)展
3)為了防止樣品污染和混淆,禁止使用96孔板和深孔板裝載樣品
4)用乙醇沉淀的樣品由于運(yùn)輸中會(huì)有少量乙醇揮發(fā),建議將樣品管蓋用封口膜纏繞4-5圈
5)考慮到核酸可能存在含有雜質(zhì)、顏色等物質(zhì)導(dǎo)致會(huì)產(chǎn)生大量損失的風(fēng)險(xiǎn),為保證樣本一次檢測(cè)合格并節(jié)約寶貴的重送樣時(shí)間,送樣建議量是高于公司判定標(biāo)準(zhǔn)的,請(qǐng)?jiān)诤怂崃孔銐虻那疤嵯卤M量按照送樣建議來(lái)送樣。
項(xiàng)目類(lèi)型 | 初檢結(jié)果(濃度、體積、純度) | 樣品狀態(tài) | ||
濃度(ng/ul) | 總量(ug) | 體積(ul) | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
二代轉(zhuǎn)錄組 | 20 | 1 | 15 | 正常 |
真核小RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
4.1常規(guī)動(dòng)物類(lèi)樣本
送樣需要選擇新鮮采集的樣本,尤其是Ultra long ONT建庫(kù),樣本的取材優(yōu)先選擇核酸含量相對(duì)較高的組織,樣本制備優(yōu)先級(jí):血液>內(nèi)臟>肌肉?;铙w取下新鮮組織(肌肉、肝臟或其他組織,避免用易于寄生微生物的表皮和腸道、可能有變異細(xì)胞的病變組織),立即剔除結(jié)締組織和脂肪組織等非研究所需的組織類(lèi)型。對(duì)腫瘤組織的取材,應(yīng)盡可能準(zhǔn)確地判定腫瘤和正常組織,腫瘤組織應(yīng)將周?chē)恼=M織切除干凈(正常組織也應(yīng)將周?chē)哪[瘤組織切除干凈),腸道組織一定要把內(nèi)容物清洗干凈
4.1.1液氮速凍組織操作流程(所有產(chǎn)品適用)
1)提前準(zhǔn)備好冷凍組織的足量液氮,預(yù)裝樣品的凍存管,并在做好標(biāo)記(盡量不使用漢字命名,命名字符控制在5個(gè)以?xún)?nèi))
2)活體取下新鮮的組織
3)迅速用預(yù)冷的PBS溶液(RNase free)或0.9%生理鹽水將組織表面的殘留血液沖洗干凈
4)如果組織體積較大,將組織切成長(zhǎng)寬高均≤0.5 mm 的小塊(即黃豆大?。?/p>
5)將凍處理好的組織樣本混合均勻后保存于2 mL 或更大體積的螺口凍存管(RNase free)中,標(biāo)注編號(hào)
6)立即(20s內(nèi))置于液氮中冷凍 3~4 h,然后轉(zhuǎn)移至-80 °C長(zhǎng)期保存
7)干冰運(yùn)輸
4.1.2TRIzol保存樣品制備流程(僅RNA細(xì)胞和研磨后的組織適用)
1)如果使用 TRIzol裂解液保存送樣,請(qǐng)務(wù)必先進(jìn)行液氮研磨破碎,樣品量取參考標(biāo)準(zhǔn)送樣量的1/3,然后溶于 TRIzol 中,組織樣品切勿過(guò)量
2)震蕩混勻,常溫裂解 5 min 后,使用低溫離心機(jī)12000g離心10min,將上清液轉(zhuǎn)至新的2.0ml離心管中(拍質(zhì)控照片,方便核查),轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,運(yùn)輸時(shí)選擇干冰寄送
3)禁止使用trizol保存組織樣品送樣
4.1.3RNAlater? Tissue Collection保存樣品制備流程(僅RNA適用)
1)用RNAlater? Solution保存組織之前,需要將組織切割成長(zhǎng)寬高均≤ 0.5 mm的小塊
2)如果組織帶血液或其他體液,需要過(guò)夜后更換一次RNAlater? Solution;不要將剛浸入RNAlater Solution中的樣本立即冷凍,需將樣本置于4 °C 保存過(guò)夜(使Solution充分浸潤(rùn)組織樣本),然后轉(zhuǎn)移至-20 °C 或-80 °C 長(zhǎng)期保存
3)RNAlater? Solution 不會(huì)影響組織結(jié)構(gòu),可以把已保存的組織從 RNAlater? Solution中取出,切下實(shí)驗(yàn)所需的用量,把剩余的組織再放入到原來(lái)的保存液中繼續(xù)保存
4)保存于RNAlater? Solution中樣本,-20 °C 存放時(shí),樣本不會(huì)結(jié)凍,但可能會(huì)有晶體析出,這并不影響后續(xù)的 RNA 提取工作;-80 °C 存放時(shí),樣本會(huì)結(jié)凍, 在進(jìn)行 RNA 提取前,需置于冰上融化再進(jìn)行后續(xù)操作,解凍后的樣本可再次放入-80 °C 保存
5)一般來(lái)講,生物樣本保存于RNAlater? Solution中,37 °C可存放1天,25 °C(室溫)可存放1周,4 °C 可存放1個(gè)月,-20 °C 或-80 °C 可長(zhǎng)期保存。但鑒于生物樣本的特殊性及實(shí)驗(yàn)可重復(fù)性,建議所有保存于RNAlater? Solution中樣本,都要置于-20 °C 或-80 °C 長(zhǎng)期保存
注:如果組織較小,建議優(yōu)先選擇此方式送樣
4.2全血
DNA類(lèi)產(chǎn)品推薦使用EDTA抗凝管采集后分裝,RNA類(lèi)產(chǎn)品優(yōu)先推薦使用PAXgene血液RNA管采集。血樣建議為新鮮采集,不建議保存時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。血液相關(guān)產(chǎn)品僅接收全血或分離的細(xì)胞樣本,不接收血清、血漿。
4.2.1DNA常規(guī)產(chǎn)品制備操作流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會(huì)影響實(shí)驗(yàn)所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過(guò)EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長(zhǎng)期保存(實(shí)際根據(jù)采血管的說(shuō)明要求操作)
3)干冰運(yùn)輸
注1:血液采集管請(qǐng)盡量不要用需專(zhuān)門(mén)對(duì)應(yīng)提取試劑盒的采血管,以防送樣后我們因無(wú)對(duì)應(yīng)試劑盒影響提取時(shí)間(盡量送樣前溝通)
注2:采集完血液之后需將血液轉(zhuǎn)移至EP管中,玻璃材質(zhì)采血管冷凍之后易碎
4.2.2Ultra Long ONT樣本制備流程
4.2.2.1新鮮血液
1)采集血液( 5- 10mL),然后加入含 EDTA 抗凝管中(不可使用肝素 、檸檬酸鈉等抗凝管,建議使用 Cell-Free 采血管,做好標(biāo)記(樣本名稱(chēng),日期,體積)
2)輕輕顛倒混勻十次,室溫正立放置
3)冰袋(4 °C )運(yùn)輸需避開(kāi)節(jié)假日(注意冰袋盡可能多放,樣本置于中間,保證箱體溫度維持在 4 °C)。從血液離體算起,運(yùn)輸至實(shí)驗(yàn)人員手中不可超過(guò) 3 天
4.2.2.2凍存血液
1)血液用抗凝管采集后輕輕顛倒混勻十次
2)哺乳動(dòng)物血液分裝到 2ml 離心管里,1ml/管(至少2管,若血量不足,可根據(jù)實(shí)際情況送樣)
3)魚(yú)類(lèi)、禽類(lèi)、兩棲類(lèi)全血分裝到 1.5ml 離心管里, 100ul/管(至少5管,若血量不足,可根據(jù)實(shí)際情況送樣)
4)做好標(biāo)記(樣本名稱(chēng), 日期,體積),液氮速凍,干冰寄送
4.2.3RNA產(chǎn)品制備操作流程
4.2.3.1PAXgene血液RNA管制備流程(人和靈長(zhǎng)類(lèi)動(dòng)物優(yōu)先選擇該方式送樣)
1)PAXgene管的介紹
在研究細(xì)胞內(nèi) RNA 使用的許多分子測(cè)試中,采集全血是第一步。 這類(lèi)測(cè)試中的最大挑戰(zhàn)是細(xì)胞內(nèi) RNA不穩(wěn)定,在采血后幾小時(shí)內(nèi)迅速降解。 此外,通過(guò)基因誘導(dǎo)過(guò)程,某些種類(lèi)的 RNA 采血后在體外增加。 體外 RNA 降解和基因誘導(dǎo)均會(huì)導(dǎo)致體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄物相對(duì)數(shù)量估計(jì)過(guò)低或過(guò)高。 PAXgene 血液RNA 管含有一種附加劑,通過(guò)減少體外 RNA 降解和盡量減少基因誘導(dǎo),可穩(wěn)定體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄譜。 與PAXgene 血液 RNA 套件配套使用時(shí),PAXgene 血液 RNA 管可以實(shí)現(xiàn)準(zhǔn)確的基因轉(zhuǎn)錄物檢測(cè)和定量
2)采集前準(zhǔn)備
A.PAXgene Blood RNA Tube(2.5mL采血管,含專(zhuān)用RNA穩(wěn)定劑)
B.符合標(biāo)準(zhǔn)的靜脈采血裝置(無(wú)菌針頭、持針器、止血帶等)
C.毒用品(酒精棉片、碘伏等)
D.生物安全防護(hù)裝備(手套、護(hù)目鏡等)
3)采集流程
A.確保 PAXgene 血液 RNA 管使用前在 18-25?C 溫度下,且正確貼有標(biāo)本識(shí)別標(biāo)簽
B.如果 PAXgene 血液 RNA 管是待抽吸的唯一試管,應(yīng)當(dāng)先抽血至“丟棄管”,再抽血至 PAXgene 血液 RNA 管,這樣便可以灌注放血過(guò)程中使用的采血裝置的內(nèi)部空間。 否則,PAXgene 血液 RNA 管應(yīng)是放血程序中最后抽吸的試管
C.采用您所在機(jī)構(gòu)推薦的標(biāo)準(zhǔn)靜脈穿刺技術(shù)程序,使用采血裝置和試管固定器,采血2.5ml至 PAXgene 血液RNA 管
D.采血后立即輕輕地將PAXgene 血液 RNA 管倒置 8–10 次
E.在室溫下 (18–25?C) 直立存儲(chǔ) PAXgene 血液 RNA 管至少 2 小時(shí),最多 72 小時(shí),然后再處理或轉(zhuǎn)移至冷藏室 (2–8?C) 或冷凍室 (-20?C)。 若需要 -70?C / -80?C 的存儲(chǔ)溫度,請(qǐng)參見(jiàn)“PAXgene 血液RNA 管內(nèi)所采集標(biāo)本的冷凍和解凍程序” 以獲取詳細(xì)信息
4)注意事項(xiàng)
A.確保采血管在有效期內(nèi),無(wú)漏液或變色(正常試劑為淡黃色)
B.不可預(yù)先打開(kāi)管蓋,避免穩(wěn)定劑失效
C.一旦受到碰撞,冷凍的 PAXgene 血液 RNA 管就容易破裂。為降低在運(yùn)輸期間破裂的風(fēng)險(xiǎn),請(qǐng)按照處理玻璃管的方式來(lái)處理冷凍的試管。使用者必須確認(rèn)自己的 PAXgene 血液 RNA 管冷凍和運(yùn)輸協(xié)議
D.PAXgene 血液 RNA 管填充不足會(huì)導(dǎo)致血液與附加劑的比率錯(cuò)誤,且可能導(dǎo)致分析結(jié)果錯(cuò)誤或產(chǎn)品性能欠佳
E.PAXgene血液 RNA 系統(tǒng)不適用于采集和純化病毒 RNA
4.2.3.2EDTA抗凝管送樣制備流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會(huì)影響實(shí)驗(yàn)所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過(guò)EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長(zhǎng)期保存(實(shí)際根據(jù)采血管的說(shuō)明要求操作)
3)干冰運(yùn)輸
4.3細(xì)胞
4.3.1貼壁細(xì)胞
4.3.1.1液氮速凍法
1)確定細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好;離心得到細(xì)胞沉淀(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細(xì)胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細(xì)胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
4.3.1.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細(xì)胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個(gè)細(xì)胞加 1 mL TRIzol
2)細(xì)胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團(tuán),需用吸頭將細(xì)胞團(tuán)吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細(xì)胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
注:判斷裂解液加入量是否合適的標(biāo)準(zhǔn)可以根據(jù)細(xì)胞溶解物的黏度來(lái)判斷。在細(xì)胞剛?cè)芙鈺r(shí),可以發(fā)現(xiàn)有絲狀物出現(xiàn),若裂解液加入量合適,吹打幾次后,絲狀物會(huì)消失,液體黏稠性下降;若裂解液的量過(guò)少,絲狀物往往一直存在,液體黏稠性大,應(yīng)繼續(xù)補(bǔ)加裂解液。裂解液加入量過(guò)少,會(huì)導(dǎo)致抽提的 RNA 降解
4.3.2懸浮細(xì)胞
4.3.2.1液氮速凍法
1)確定細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好;離心得到細(xì)胞沉淀(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細(xì)胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細(xì)胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
4.3.2.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細(xì)胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個(gè)細(xì)胞加 1 mL TRIzol
2)細(xì)胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團(tuán),需用吸頭將細(xì)胞團(tuán)吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細(xì)胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、采集方法及保存狀態(tài)、提取方法及操作、實(shí)驗(yàn)器材及環(huán)境等因素均有密不可分的聯(lián)系,尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣本的質(zhì)量、總量要求更高,望知悉及理解,并做好樣本備份。為了保障獲得高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)務(wù)必按照送樣手冊(cè)所規(guī)定的準(zhǔn)備樣本。對(duì)珍貴樣本或者微量樣本,建議自行提取
1)組織速凍時(shí)間:組織離體后,胞內(nèi)核酸便開(kāi)始降解,尤其是 RNA,故采集時(shí),目的組織離體后,需立即速凍,建議 3min 內(nèi)完成,越快越好。速凍時(shí)間過(guò)短會(huì)導(dǎo)致速凍不徹底,核酸有降解風(fēng)險(xiǎn)
2)組織送樣量:建議送樣量適用于 95%的物種組織,少部分組織因胞內(nèi)核酸量較低,需適當(dāng)增加送樣量,比如動(dòng)物皮膚、毛發(fā)等。請(qǐng)嚴(yán)格按照上方組織送樣量要求送樣,送樣量過(guò)少或過(guò)多均不利于提取實(shí)驗(yàn)。采樣量較少會(huì)導(dǎo)致提取的核酸總量、濃度不合格,采樣量過(guò)多反而會(huì)造成速凍不徹底、提取取樣困難、凍融降解等危險(xiǎn)
3)組織狀態(tài):不建議送組織狀態(tài)差或非生長(zhǎng)旺盛期樣品,核酸有一定幾率降解
4)組織保存管的選擇:所有組織樣品務(wù)必使用離心管或螺紋管保存,切勿直接裝入密封袋(低溫凍脆易破裂,導(dǎo)致樣品泄露,交叉污染)保存
5)組織樣品保存方法選擇:首選液氮速凍;沒(méi)有液氮條件的,可直接放入-80℃冰箱凍存。未使用液氮速凍或液氮速凍時(shí)間過(guò)短都有一定幾率導(dǎo)致核酸降解
6)組織送樣方式的選擇:干冰運(yùn)輸,且需要保證干冰的充足,冰袋和常溫送樣,有幾率導(dǎo)致核酸的降解。除RNA類(lèi)樣品可使用RNAlater保存送樣,其余產(chǎn)品均建議送速凍組織,不建議使用保護(hù)液送樣,化開(kāi)離心會(huì)有幾率導(dǎo)致核酸降解;不建議酒精送樣,固定不徹底,有一定幾率殘留核酸酶,降解核酸
7)凍融組織: 組織凍存后,一旦凍融,核酸降解概率大于 80%,幾乎不可能提取成功,此類(lèi)組織不建議送樣。請(qǐng)各位老師送樣前注意組織保存狀態(tài), 確保組織未發(fā)生過(guò)凍融情況
8)帶血組織:由于血液沒(méi)有專(zhuān)業(yè)的保護(hù)劑,去除不凈一起速凍送樣會(huì)影響組織的完整性
9)長(zhǎng)年保存的組織:保存時(shí)間超過(guò)一年的組織不建議送樣
10)組織分離要求:正常組織樣本中不能含有病變組織,而病變組織樣本中也不可以?shī)A帶有正常組織,提取實(shí)驗(yàn)時(shí)無(wú)法精確取樣,無(wú)法稱(chēng)重。組織量過(guò)多的不能全部取樣,只隨機(jī)選取適量組織提取
11)對(duì)于同一個(gè)組織樣品需要同時(shí)提取 DNA和 RNA 的,請(qǐng)務(wù)必分成兩管分批次送樣。樣本的特殊處理包括:鹽處理、溫度處理、藥物處理、病毒侵染、傷害處理、干旱處理等脅迫處理方式,不同程度的處理對(duì)樣本的核酸質(zhì)量會(huì)造成不同程度的影響,常見(jiàn)的會(huì)導(dǎo)致核酸 的降解或者得率降低。因此,經(jīng)過(guò)特殊處理的樣本,在送樣時(shí),務(wù)必請(qǐng)?jiān)跇颖拘畔沃羞M(jìn)行詳細(xì)的備注,以便盡量提高提取的成功率和避免樣本的浪費(fèi)
6.1樣本總量不足、濃度過(guò)低存在風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
6.2降解樣本風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
5)導(dǎo)致數(shù)據(jù)duplication比例高、隨機(jī)性差
6)導(dǎo)致Small RNA rRNA比例高,影響有效數(shù)據(jù),文庫(kù)片段異常
6.3蛋白或其他雜質(zhì)污染
1)可能影響Small RNA電泳分離,造成切膠不準(zhǔn),影響問(wèn)題質(zhì)量
2)可能影響RNA-seq磁珠分離導(dǎo)致建庫(kù)失敗,或即使達(dá)到上機(jī)要求也可能導(dǎo)致文庫(kù)隨機(jī)性差等問(wèn)題
3)文庫(kù)構(gòu)建失敗
4)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
6.4目標(biāo)RNA含量低
1)總RNA達(dá)到要求,但由于樣本特異性,small RNA含量低于正常樣本,導(dǎo)致建庫(kù)失敗
2)總RNA達(dá)到要求,但由于處理或組織部位的特異性,mRNA降解或含量低,導(dǎo)致建庫(kù)失敗或者測(cè)序數(shù)據(jù)中rRNA 數(shù)據(jù)比例高
]]>1.1適用范圍
本指南介紹百邁客動(dòng)物類(lèi)組織&核酸樣品的送樣要求及制備方法。采集送樣前請(qǐng)?jiān)敿?xì)閱讀。信息單中樣本名稱(chēng)、組織部位必須與實(shí)物相符,避免因信息單與實(shí)物不符導(dǎo)致反復(fù)核對(duì),影響樣本質(zhì)量、錄入周期,導(dǎo)致提取核酸質(zhì)量不滿(mǎn)足建庫(kù)測(cè)序要求,實(shí)驗(yàn)周期過(guò)長(zhǎng)等
1.2聲明
對(duì)于危害程度為第一、二類(lèi)的高致病性樣品,只接收提取后的核酸樣品,不接收組織樣。對(duì)于危害程度為三、四類(lèi)的致病性或傳染性的組織樣,必須先通過(guò)銷(xiāo)售或運(yùn)營(yíng)與醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)平臺(tái)負(fù)責(zé)人溝通,確認(rèn)無(wú)高致病和傳染性且能進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)后再安排樣品寄送。危害程度的判定標(biāo)準(zhǔn)具體參見(jiàn)《人間傳染的病原微生物名錄》
1.3提取風(fēng)險(xiǎn)提示
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、樣本制備、樣本交接、提取方法與操作、以及環(huán)境等因素息息相關(guān),尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣的要求更高。組織提取時(shí)可能受到上下游處理操作的影響,因此較難保證單次提取滿(mǎn)足質(zhì)量要求,望老師知悉理解,并做好組織備份。為保障獲得相對(duì)較高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)老師務(wù)必按照以下指導(dǎo)原則準(zhǔn)備樣本。對(duì)于珍貴樣本或微量樣本,建議自行提取
注意:未在表格出現(xiàn)的物種,請(qǐng)單獨(dú)溝通。送樣量結(jié)果展示為滿(mǎn)足提取一次的量,如樣品經(jīng)過(guò)特殊處理或樣本狀態(tài)異常有幾率影響得率,為了保證您的實(shí)驗(yàn)可以順利進(jìn)行,請(qǐng)酌情增加送樣量
2.1常規(guī)動(dòng)物類(lèi)組織送樣要求
物種 | 舉例說(shuō)明 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 組織部位(g) | ||||||
心臟 | 肝臟 | 脾臟 | 腎臟 | 腦 | 肌肉 | 腸道 | ||||
常規(guī)動(dòng)物 | 哺乳動(dòng)物、禽類(lèi)、爬行動(dòng)物 | DNA | 重測(cè)序 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 |
SLAF | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | |||
甲基化 | 0.2 | 0.1 | 0.1 | 0.2 | – | 0.2 | 0.2 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.5 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.5 | 0.25 | 0.25 | 0.5 | – | 0.5 | 0.5 | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | 0.5 | 0.5 | 1 | – | 1 | 1 | |||
Ultra Long ONT | – | 1 | 1 | 1 | – | 1 | 1 | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | |||
真核小RNA | 0.3 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | 0.1 | |||
節(jié)肢動(dòng)物 | 昆蟲(chóng)(蚊子、蒼蠅、螞蟻) | DNA | 重測(cè)序 | – | – | – | – | – | 0.2 | – |
SLAF | – | – | – | – | – | 0.2 | – | |||
甲基化 | – | – | – | – | – | 0.2 | – | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | – | – | – | – | – | 0.3 | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | – | – | – | – | – | 0.3 | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | – | – | – | – | – | 1 | – | |||
Ultra Long ONT | – | – | – | – | – | 1 | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | – | – | – | – | – | 0.2 | 0.2 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | – | – | – | – | – | 0.2 | 0.2 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | – | – | – | – | – | 0.2 | 0.2 | |||
真核小RNA | – | – | – | – | – | 0.2 | 0.2 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | – | – | – | – | – | 0.2 | 0.2 | |||
水產(chǎn)動(dòng)物 | 蝦、蟹、魚(yú)等(針對(duì)微小組織類(lèi)型 需要在干冰上進(jìn)行,注意操作時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng)) | DNA | 重測(cè)序 | – | – | – | – | – | 0.3 | – |
外顯子 | – | – | – | – | – | 0.3 | – | |||
甲基化 | – | – | – | – | – | 0.3 | – | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | – | – | – | – | – | 1 | – | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | – | – | – | – | – | 1 | – | |||
PB動(dòng)植物基因組 | – | – | – | – | – | 1.5 | – | |||
Ultra Long ONT | – | – | – | – | – | 1.5 | – | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | 0.3 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | |||
真核小RNA | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 | 0.2 |
物種 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 送樣量(g) |
皮膚 | DNA | 重測(cè)序 | 0.5 |
外顯子 | 0.5 | ||
甲基化 | 0.5 | ||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 1 | ||
ONT動(dòng)植物基因組 | 1 | ||
PB動(dòng)植物基因組 | 2 | ||
Ultra Long ONT | – | ||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | ||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.3 | ||
真核小RNA | 0.3 | ||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.3 |
2.2動(dòng)物類(lèi)血液送樣量
組織部位 | 物種 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 送樣量(ml) |
全血 | 哺乳動(dòng)物 | DNA-EDTA抗凝 | 重測(cè)序 | 0.3 |
SLAF | 0.3 | |||
甲基化 | 0.3 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.5 | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.5 | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 1 | |||
Ultra Long ONT | 1 | |||
RNA-PAXgen管送樣 | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 10 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 10 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 10 | |||
真核小RNA | 10 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 10 | |||
RNA-EDTA抗凝 | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.5 | |||
禽類(lèi) | DNA-EDTA抗凝 | 重測(cè)序 | 0.05 | |
SLAF | 0.05 | |||
甲基化 | 0.05 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 0.1 | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 0.1 | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 0.1 | |||
Ultra Long ONT | 0.1 | |||
RNA-EDTA抗凝 | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 0.5 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 0.5 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 0.5 | |||
真核小RNA | 0.5 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 0.5 |
2.3動(dòng)物類(lèi)細(xì)胞送樣量
組織部位 | 物種 | 核酸類(lèi)型 | 產(chǎn)品類(lèi)型 | 送樣量(個(gè)) |
細(xì)胞 | DNA | 重測(cè)序 | 1*10e6 | |
SLAF | 1*10e6 | |||
甲基化 | 1*10e6 | |||
ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | 5*10e6 | |||
ONT動(dòng)植物基因組 | 5*10e6 | |||
PB動(dòng)植物基因組 | 5*10e6 | |||
Ultra Long ONT | 1*10e7 | |||
RNA | 全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 5*10e6 | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 5*10e6 | |||
二代轉(zhuǎn)錄組 | 3*10e6 | |||
真核小RNA | 3*10e6 | |||
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 3*10e6 |
1)核酸送樣需要提供相關(guān)檢測(cè)結(jié)果,DNA類(lèi)核酸可提供以下檢測(cè)手段中的一種或多種檢測(cè)結(jié)果: Qubit、 NanoDrop、 AGE,同時(shí)請(qǐng)采取適當(dāng)?shù)募兓椒?,以避免多糖、多酚、蛋白或者核酸酶?duì)DNA樣品的污染,并詳細(xì)注明溶解DNA所使用的溶解液類(lèi)型
2)如果您開(kāi)展的實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目為miRNA的相關(guān)實(shí)驗(yàn),并且提供的是總RNA的樣本,請(qǐng)務(wù)必確認(rèn)您采用的總RNA的提取方法保留了小RNA ( 包括miRNA),提取試劑盒型號(hào)備注送樣信息單中
3.1二代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | SLAF | 重測(cè)序 | 甲基化 | 外顯子 | FFPE | PCR產(chǎn)物 | PCR-free | chip-seq |
濃度ng/ul | 5 | 1 | 5 | 6 | 14 | 0.6 | 40 | 1 |
總量ug | 1.5 | 0.1 | 1 | 0.1 | 0.25 | 0.1 | 1 | 0.06 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 15 | 20 | 15 | 15 | 15 |
3.2三代DNA送樣量要求
產(chǎn)品類(lèi)型 | ONT動(dòng)植物重測(cè)序 | ONT動(dòng)植物基因組 | PB動(dòng)植物基因組 | 超長(zhǎng) |
濃度ng/ul | 40 | 100 | 50 | 50 |
總量ug | 4 | 10 | 15 | 15 |
體積ul | 15 | 15 | 15 | 50 |
3.3RNA類(lèi)送樣量要求
1)針對(duì)核酸有雜質(zhì)、污染、粘稠、顏色等情況,需要過(guò)柱純化后送樣或者酌情增加送樣量
2)核酸樣品建議使用1.5ml、2ml EP管裝載樣品,其他保存管容易破裂且不利于保存樣品和后續(xù)實(shí)驗(yàn)的開(kāi)展
3)為了防止樣品污染和混淆,禁止使用96孔板和深孔板裝載樣品
4)用乙醇沉淀的樣品由于運(yùn)輸中會(huì)有少量乙醇揮發(fā),建議將樣品管蓋用封口膜纏繞4-5圈
5)考慮到核酸可能存在含有雜質(zhì)、顏色等物質(zhì)導(dǎo)致會(huì)產(chǎn)生大量損失的風(fēng)險(xiǎn),為保證樣本一次檢測(cè)合格并節(jié)約寶貴的重送樣時(shí)間,送樣建議量是高于公司判定標(biāo)準(zhǔn)的,請(qǐng)?jiān)诤怂崃孔銐虻那疤嵯卤M量按
項(xiàng)目類(lèi)型 | 初檢結(jié)果(濃度、體積、純度) | 樣品狀態(tài) | ||
濃度(ng/ul) | 總量(ug) | 體積(ul) | ||
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(PB) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
全長(zhǎng)轉(zhuǎn)錄組(ONT) | 100 | 1 | 15 | 正常 |
二代轉(zhuǎn)錄組 | 20 | 1 | 15 | 正常 |
真核小RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
長(zhǎng)鏈非編碼RNA | 80 | 1 | 15 | 正常 |
4.1常規(guī)動(dòng)物類(lèi)樣本(脊柱動(dòng)物、哺乳動(dòng)物)
常規(guī)動(dòng)物主要包括脊椎動(dòng)物組織樣本主要包括:哺乳動(dòng)物、禽類(lèi)、爬行動(dòng)物以及兩棲動(dòng)物。送樣需要選擇新鮮采集的樣本,尤其是Ultra long ONT建庫(kù),樣本的取材優(yōu)先選擇核酸含量相對(duì)較高的組織,樣本制備優(yōu)先級(jí):血液>內(nèi)臟>肌肉?;铙w取下新鮮組織(肌肉、肝臟或其他組織,避免用易于寄生微生物的表皮和腸道、可能有變異細(xì)胞的病變組織),立即剔除結(jié)締組織和脂肪組織等非研究所需的組織類(lèi)型。對(duì)腫瘤組織的取材,應(yīng)盡可能準(zhǔn)確地判定腫瘤和正常組織,腫瘤組織應(yīng)將周?chē)恼=M織切除干凈(正常組織也應(yīng)將周?chē)哪[瘤組織切除干凈),腸道組織一定要把內(nèi)容物清洗干凈
4.1.1液氮速凍組織操作流程(所有產(chǎn)品適用)
1)提前準(zhǔn)備好冷凍組織的足量液氮,預(yù)裝樣品的凍存管,并在做好標(biāo)記(盡量不使用漢字命名,命名字符控制在5個(gè)以?xún)?nèi))
2)活體取下新鮮的組織
3)迅速用預(yù)冷的PBS溶液(RNase free)或0.9%生理鹽水將組織表面的殘留血液沖洗干凈
4)如果組織體積較大,將組織切成長(zhǎng)寬高均≤0.5 mm 的小塊(即黃豆大?。?/p>
5)將凍處理好的組織樣本混合均勻后保存于2 mL 或更大體積的螺口凍存管(RNase free)中,標(biāo)注編號(hào)
6)立即(20s內(nèi))置于液氮中冷凍 3~4 h,然后轉(zhuǎn)移至-80 °C長(zhǎng)期保存
7)干冰運(yùn)輸
4.1.2TRIzol保存樣品制備流程(僅RNA細(xì)胞組織適用)
1)如果使用 TRIzol裂解液保存送樣,請(qǐng)務(wù)必先進(jìn)行液氮研磨破碎,樣品量取參考標(biāo)準(zhǔn)送樣量的1/3,然后溶于 TRIzol 中,組織樣品切勿過(guò)量
2)震蕩混勻,常溫裂解 5 min 后,使用低溫離心機(jī)12000g離心10min,將上清液轉(zhuǎn)至新的2.0ml離心管中(拍質(zhì)控照片,方便核查),轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,運(yùn)輸時(shí)選擇干冰寄送
3)禁止使用trizol保存組織樣品送樣
4.1.3RNAlater? Tissue Collection保存樣品制備流程(僅RNA適用)
1)用RNAlater? Solution保存組織之前,需要將組織切割成長(zhǎng)寬高均≤ 0.5 mm的小塊
2)如果組織帶血液或其他體液,需要過(guò)夜后更換一次RNAlater? Solution;不要將剛浸入RNAlater Solution中的樣本立即冷凍,需將樣本置于4 °C 保存過(guò)夜(使Solution充分浸潤(rùn)組織樣本),然后轉(zhuǎn)移至-20 °C 或-80 °C 長(zhǎng)期保存
3)RNAlater? Solution 不會(huì)影響組織結(jié)構(gòu),可以把已保存的組織從 RNAlater? Solution中取出,切下實(shí)驗(yàn)所需的用量,把剩余的組織再放入到原來(lái)的保存液中繼續(xù)保存
4)保存于RNAlater? Solution中樣本,-20 °C 存放時(shí),樣本不會(huì)結(jié)凍,但可能會(huì)有晶體析出,這并不影響后續(xù)的 RNA 提取工作;-80 °C 存放時(shí),樣本會(huì)結(jié)凍, 在進(jìn)行 RNA 提取前,需置于冰上融化再進(jìn)行后續(xù)操作,解凍后的樣本可再次放入-80 °C 保存
5)一般來(lái)講,生物樣本保存于RNAlater? Solution中,37 °C可存放1天,25 °C(室溫)可存放1周,4 °C 可存放1個(gè)月,-20 °C 或-80 °C 可長(zhǎng)期保存。但鑒于生物樣本的特殊性及實(shí)驗(yàn)可重復(fù)性,建議所有保存于RNAlater? Solution中樣本,都要置于-20 °C 或-80 °C 長(zhǎng)期保存
4.2全血
DNA類(lèi)產(chǎn)品推薦使用EDTA抗凝管采集后分裝,RNA類(lèi)產(chǎn)品優(yōu)先推薦使用PAXgene血液RNA管采集。血樣建議為新鮮采集,不建議保存時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。血液相關(guān)產(chǎn)品僅接收全血或分離的細(xì)胞樣本,不接收血清、血漿
4.2.1DNA常規(guī)產(chǎn)品制備操作流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會(huì)影響實(shí)驗(yàn)所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過(guò)EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長(zhǎng)期保存(實(shí)際根據(jù)采血管的說(shuō)明要求操作)
3)干冰運(yùn)輸
注1:血液采集管請(qǐng)盡量不要用需專(zhuān)門(mén)對(duì)應(yīng)提取試劑盒的采血管,以防送樣后我們因無(wú)對(duì)應(yīng)試劑盒影響提取時(shí)間(盡量送樣前溝通)
注2:采集完血液之后需將血液轉(zhuǎn)移至EP管中,玻璃材質(zhì)采血管冷凍之后易碎
4.2.2Ultra Long ONT樣本制備流程
4.2.2.1新鮮血液
1)采集血液( 5- 10mL),然后加入含 EDTA 抗凝管中(不可使用肝素 、檸檬酸鈉等抗凝管,建議使用 Cell-Free 采血管,做好標(biāo)記(樣本名稱(chēng),日期,體積)
2)輕輕顛倒混勻十次,室溫正立放置
3)冰袋(4 °C )運(yùn)輸需避開(kāi)節(jié)假日(注意冰袋盡可能多放,樣本置于中間,保證箱體溫度維持在 4 °C)。從血液離體算起,運(yùn)輸至實(shí)驗(yàn)人員手中不可超過(guò) 3 天
4.2.2.2凍存血液
1)血液用抗凝管采集后輕輕顛倒混勻十次
2)哺乳動(dòng)物血液分裝到 2ml 離心管里,1ml/管(至少2管,若血量不足,可根據(jù)實(shí)際情況送樣)
3)魚(yú)類(lèi)、禽類(lèi)、兩棲類(lèi)全血分裝到 1.5ml 離心管里, 100ul/管(至少5管,若血量不足,可根據(jù)實(shí)際情況送樣)
4)做好標(biāo)記(樣本名稱(chēng), 日期,體積),液氮速凍,干冰寄送
4.2.3RNA產(chǎn)品制備操作流程
4.2.3.1PAXgene血液RNA管制備流程(人和靈長(zhǎng)類(lèi)動(dòng)物優(yōu)先選擇該方式送樣)
1)PAXgene管的介紹
在研究細(xì)胞內(nèi) RNA 使用的許多分子測(cè)試中,采集全血是第一步。 這類(lèi)測(cè)試中的最大挑戰(zhàn)是細(xì)胞內(nèi) RNA不穩(wěn)定,在采血后幾小時(shí)內(nèi)迅速降解。 此外,通過(guò)基因誘導(dǎo)過(guò)程,某些種類(lèi)的 RNA 采血后在體外增加。 體外 RNA 降解和基因誘導(dǎo)均會(huì)導(dǎo)致體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄物相對(duì)數(shù)量估計(jì)過(guò)低或過(guò)高。 PAXgene 血液RNA 管含有一種附加劑,通過(guò)減少體外 RNA 降解和盡量減少基因誘導(dǎo),可穩(wěn)定體內(nèi)基因轉(zhuǎn)錄譜。 與PAXgene 血液 RNA 套件配套使用時(shí),PAXgene 血液 RNA 管可以實(shí)現(xiàn)準(zhǔn)確的基因轉(zhuǎn)錄物檢測(cè)和定量
2)采集前準(zhǔn)備
A.PAXgene Blood RNA Tube(2.5mL采血管,含專(zhuān)用RNA穩(wěn)定劑)
B.符合標(biāo)準(zhǔn)的靜脈采血裝置(無(wú)菌針頭、持針器、止血帶等)
C.毒用品(酒精棉片、碘伏等)
D.生物安全防護(hù)裝備(手套、護(hù)目鏡等)
3)采集流程
A.確保 PAXgene 血液 RNA 管使用前在 18-25?C 溫度下,且正確貼有標(biāo)本識(shí)別標(biāo)簽
B.如果 PAXgene 血液 RNA 管是待抽吸的唯一試管,應(yīng)當(dāng)先抽血至“丟棄管”,再抽血至 PAXgene 血液 RNA 管,這樣便可以灌注放血過(guò)程中使用的采血裝置的內(nèi)部空間。 否則,PAXgene 血液 RNA 管應(yīng)是放血程序中最后抽吸的試管
C.采用您所在機(jī)構(gòu)推薦的標(biāo)準(zhǔn)靜脈穿刺技術(shù)程序,使用采血裝置和試管固定器,采血2.5ml至 PAXgene 血液RNA 管
D.采血后立即輕輕地將PAXgene 血液 RNA 管倒置 8–10 次
E.在室溫下 (18–25?C) 直立存儲(chǔ) PAXgene 血液 RNA 管至少 2 小時(shí),最多 72 小時(shí),然后再處理或轉(zhuǎn)移至冷藏室 (2–8?C) 或冷凍室 (-20?C)。 若需要 -70?C / -80?C 的存儲(chǔ)溫度,請(qǐng)參見(jiàn)“PAXgene 血液RNA 管內(nèi)所采集標(biāo)本的冷凍和解凍程序” 以獲取詳細(xì)信息
4)注意事項(xiàng)
A.確保采血管在有效期內(nèi),無(wú)漏液或變色(正常試劑為淡黃色)
B.不可預(yù)先打開(kāi)管蓋,避免穩(wěn)定劑失效
C.一旦受到碰撞,冷凍的 PAXgene 血液 RNA 管就容易破裂。為降低在運(yùn)輸期間破裂的風(fēng)險(xiǎn),請(qǐng)按照處理玻璃管的方式來(lái)處理冷凍的試管。使用者必須確認(rèn)自己的 PAXgene 血液 RNA 管冷凍和運(yùn)輸協(xié)議
D.PAXgene 血液 RNA 管填充不足會(huì)導(dǎo)致血液與附加劑的比率錯(cuò)誤,且可能導(dǎo)致分析結(jié)果錯(cuò)誤或產(chǎn)品性能欠佳
E.PAXgene血液 RNA 系統(tǒng)不適用于采集和純化病毒 RNA
4.2.3.2EDTA抗凝管送樣制備流程
1)用醫(yī)用抗凝管或已裝有抗凝劑(選用檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝劑,由于會(huì)影響實(shí)驗(yàn)所以不可用肝素)的旋蓋管收集全血樣本
2)上下輕輕顛倒混勻十次后,分裝到常規(guī)EP管中(體積不要超過(guò)EP管的一半),轉(zhuǎn)移至-20或-80 °C長(zhǎng)期保存(實(shí)際根據(jù)采血管的說(shuō)明要求操作)
3)干冰運(yùn)輸
4.3昆蟲(chóng)
1)昆蟲(chóng)樣本,需進(jìn)行表面微生物的清洗,某些吸血性昆蟲(chóng),例如蚊子,血吸蟲(chóng),該類(lèi)型樣本可能存在外源污染,需要進(jìn)行切腹,去除腸道處理。較大個(gè)體的選取不帶腸道部分的組織,將組織切成長(zhǎng)寬高均≤0.5 cm 的小塊(即黃豆大小),對(duì)于較小個(gè)體只能用整個(gè)個(gè)體的,應(yīng)進(jìn)行適當(dāng)?shù)酿囸I處理(注意保證昆蟲(chóng)的活性)
2)提前準(zhǔn)備好冷凍組織的足量液氮,預(yù)裝樣品的凍存管,并做好標(biāo)記(盡量不使用漢字命名,命名字符控制在5個(gè)以?xún)?nèi))
3)轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
注1:小型昆蟲(chóng)組織務(wù)必在信息單中備注微量樣本需液氮交接防止降解。同時(shí)該類(lèi)樣本因只滿(mǎn)足一次或低于常規(guī)一次提取用量,我們無(wú)法保證100%提取合格
注2:蜜蜂送樣時(shí)盡量要求老師取胸部肌肉送樣,整個(gè)蜜蜂送樣提取的核酸狀態(tài)大多數(shù)異常,影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。不建議送實(shí)驗(yàn)室剔除,因?yàn)榻M織速凍過(guò)之后再剔除會(huì)化凍,提取降解的可能性較大
4.4微生物
4.4.1細(xì)菌
1)顯微鏡下觀察細(xì)菌生長(zhǎng)狀態(tài),建議收集生長(zhǎng)期處于對(duì)數(shù)期的細(xì)菌
2)將適量體積的菌液轉(zhuǎn)移至2 mL 旋蓋尖底離心管(無(wú)菌,無(wú)核酸酶)中,于室溫下14000 ×g 離心1 min
3)棄掉培養(yǎng)基,將細(xì)菌菌體沉淀迅速置于液氮中冷凍1-3 h以上(凍存時(shí)間視組織量而定,保證樣品凍存充分),然后轉(zhuǎn)移至-80 °C長(zhǎng)期保存
4)將樣品管置于管架上固定好后埋在干冰箱的中間部位,大體積干冰運(yùn)輸
5)以下為不規(guī)范送樣圖片:菌體平板(左圖),菌液送樣(右圖)
4.4.2真菌
4.4.2.1單細(xì)胞真菌
單細(xì)胞真菌以酵母菌為代表。一次提取反應(yīng)所需酵母菌的量需≤1×107個(gè),以 5×106-1× 107個(gè)為宜。您要做的項(xiàng)目要求送樣量較大時(shí),可以將樣品按上述數(shù)量要求分裝后單獨(dú)保存
1)顯微鏡下觀察酵母菌生長(zhǎng)狀態(tài),最好收集生長(zhǎng)期處于對(duì)數(shù)期的酵母菌
2)將適量體積的酵母菌液轉(zhuǎn)移至將2 mL旋蓋尖底離心管中(無(wú)菌,無(wú)核酸酶),于室溫下14000×g 離心1 min
3)棄盡培養(yǎng)基,將酵母細(xì)胞沉淀迅速置于液氮中冷凍1-3 h以上(凍存時(shí)間視組織量而定,保證樣品凍存充分),然后轉(zhuǎn)移至-80 °C長(zhǎng)期保存
4)將樣品管置于管架上固定好后埋在干冰箱的中間部位,大體積干冰運(yùn)輸
4.4.2.2多細(xì)胞真菌(大型真菌)
1)取完整菌體,先用大量清水沖洗其表面雜質(zhì),再用純水清洗一遍,使用吸水紙吸干表面的水份后,用剪刀將組織分割為小塊,做好標(biāo)記(樣本名稱(chēng),日期,,體 積)放液氮里速凍,干冰寄送
2)菌絲:將無(wú)菌棉簽輕輕觸碰菌落或菌斑的中心部分,避免碰到邊緣或其他細(xì)菌來(lái)源。然后,將棉簽迅速劃過(guò)培養(yǎng)基表面,以收集菌絲轉(zhuǎn)移至將2 mL旋蓋尖底離心管中(無(wú)菌,無(wú)核酸酶),于室溫下14000×g 離心1 min。(可根據(jù)樣品量收集多管或使用15mL螺旋管收集)
4.5水產(chǎn)類(lèi)
水產(chǎn)類(lèi)包括淡水魚(yú)類(lèi)、海水魚(yú)類(lèi)、貝類(lèi)、藻類(lèi)。送樣需要選擇新鮮采集的樣本
1)優(yōu)先選用新鮮采集的樣品送樣,稀有樣本可酌情選取凍存組織。采集樣品時(shí)應(yīng)選取核酸含量較多的部位
2)取得活體組織后,用清水清洗,以去除污物,吸干表面液體
3)活體取材后用預(yù)冷的0.9%生理鹽水進(jìn)行清洗,去除血漬和污物
4)將樣品分割成50 mg左右的小塊(約黃豆大?。?,樣品分割和處理時(shí)應(yīng)盡量在冰上進(jìn)行,防止樣品降解。避免裝樣太滿(mǎn)以至凍裂,造成樣品污染
注:水產(chǎn)類(lèi)樣品需盡量保證為新鮮個(gè)體。盡量避免寄送保存時(shí)間較長(zhǎng)或經(jīng)過(guò)反復(fù)凍融的組織樣品。針對(duì)軟體動(dòng)物可先使用75%的乙醇進(jìn)行漂洗,漂洗干凈后液氮冷凍,干冰運(yùn)輸;針對(duì)刺胞動(dòng)物,可去除頭部和腸道等部位,保留肌肉外壁用于提取
4.6細(xì)胞
4.6.1貼壁細(xì)胞
4.6.1.1液氮速凍法
1)確定細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好;離心得到細(xì)胞沉淀(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細(xì)胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細(xì)胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
4.6.1.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細(xì)胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個(gè)細(xì)胞加 1 mL TRIzol
2)細(xì)胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團(tuán),需用吸頭將細(xì)胞團(tuán)吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細(xì)胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
4.6.2懸浮細(xì)胞
4.6.2.1液氮速凍法
1)確定細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好;離心得到細(xì)胞沉淀(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)
2)棄去培養(yǎng)基,加入 1 mlLPBS(RNase free,室溫),輕輕將細(xì)胞沉淀懸起, 轉(zhuǎn)移至 2 mL 旋蓋尖底離心管(RNase free)中
3)離心(依據(jù)客戶(hù)實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞離心步驟,注意細(xì)胞離心要適度,不要使細(xì)胞離心過(guò)實(shí)而造成裂解液不能充分滲透,4度離心機(jī),轉(zhuǎn)速800g為宜)得到細(xì)胞沉淀,棄去PBS,液氮速凍2h之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
4.6.2.2TRIzol裂解法
1)離心收集的細(xì)胞迅速溶于 TRIzol 裂解,每 5 X 10^6個(gè)細(xì)胞加 1 mL TRIzol
2)細(xì)胞溶于 TRIzol 后,如出現(xiàn)成團(tuán),需用吸頭將細(xì)胞團(tuán)吹打散,或者激烈震蕩混勻,使細(xì)胞完全溶于 TRIzol 中充分裂解
3)室溫靜置5min,之后轉(zhuǎn)移至-80℃低溫保存,送樣時(shí)選擇干冰運(yùn)輸寄送
核酸提取質(zhì)量與物種及組織部位、采集方法及保存狀態(tài)、提取方法及操作、實(shí)驗(yàn)器材及環(huán)境等因素均有密不可分的聯(lián)系,尤其是三代超長(zhǎng)提取對(duì)樣本的質(zhì)量、總量要求更高,望知悉及理解,并做好樣本備份。為了保障獲得高質(zhì)量的核酸,請(qǐng)務(wù)必按照送樣手冊(cè)所規(guī)定的準(zhǔn)備樣本。對(duì)珍貴樣本或者微量樣本,建議自行提取。
1)組織速凍時(shí)間:組織離體后,胞內(nèi)核酸便開(kāi)始降解,尤其是 RNA,故采集時(shí),目的組織離體后,需立即速凍,建議 3min 內(nèi)完成,越快越好。速凍時(shí)間過(guò)短會(huì)導(dǎo)致速凍不徹底,核酸有降解風(fēng)險(xiǎn)
2)組織送樣量:建議送樣量適用于 95%的物種組織,少部分組織因胞內(nèi)核酸量較低,需適當(dāng)增加送樣量,比如動(dòng)物皮膚、毛發(fā)等。請(qǐng)嚴(yán)格按照上方組織送樣量要求送樣,送樣量過(guò)少或過(guò)多均不利于提取實(shí)驗(yàn)。采樣量較少會(huì)導(dǎo)致提取的核酸總量、濃度不合格,采樣量過(guò)多反而會(huì)造成速凍不徹底、提取取樣困難、凍融降解等危險(xiǎn)
3)組織狀態(tài):不建議送組織狀態(tài)差或非生長(zhǎng)旺盛期樣品,核酸有一定幾率降解
4)組織保存管的選擇:所有組織樣品務(wù)必使用離心管或螺紋管保存,切勿直接裝入密封袋(低溫凍脆易破裂,導(dǎo)致樣品泄露,交叉污染)保存
5)組織樣品保存方法選擇:首選液氮速凍;沒(méi)有液氮條件的,可直接放入-80℃冰箱凍存。未使用液氮速凍或液氮速凍時(shí)間過(guò)短都有一定幾率導(dǎo)致核酸降解
6)組織送樣方式的選擇:干冰運(yùn)輸,且需要保證干冰的充足,冰袋和常溫送樣,有幾率導(dǎo)致核酸的降解。除RNA類(lèi)樣品可使用RNAlater保存送樣,其余產(chǎn)品均建議送速凍組織,不建議使用保護(hù)液送樣,化開(kāi)離心會(huì)有幾率導(dǎo)致核酸降解;不建議酒精送樣,固定不徹底,有一定幾率殘留核酸酶,降解核酸
7)凍融組織: 組織凍存后,一旦凍融,核酸降解概率大于 80%,幾乎不可能提取成功,此類(lèi)組織不建議送樣。請(qǐng)各位老師送樣前注意組織保存狀態(tài), 確保組織未發(fā)生過(guò)凍融情況
8)帶血組織:由于血液沒(méi)有專(zhuān)業(yè)的保護(hù)劑,去除不凈一起速凍送樣會(huì)影響組織的完整性
9)長(zhǎng)年保存的組織:保存時(shí)間超過(guò)一年的組織不建議送樣
10)組織分離要求:正常組織樣本中不能含有病變組織,而病變組織樣本中也不可以?shī)A帶有正常組織,提取實(shí)驗(yàn)時(shí)無(wú)法精確取樣,無(wú)法稱(chēng)重。組織量過(guò)多的不能全部取樣,只隨機(jī)選取適量組織提取
11)對(duì)于同一個(gè)組織樣品需要同時(shí)提取 DNA和 RNA 的,請(qǐng)務(wù)必分成兩管分批次送樣。樣本的特殊處理包括:鹽處理、溫度處理、藥物處理、病毒侵染、傷害處理、干旱處理等脅迫處理方式,不同程度的處理對(duì)樣本的核酸質(zhì)量會(huì)造成不同程度的影響,常見(jiàn)的會(huì)導(dǎo)致核酸 的降解或者得率降低。因此,經(jīng)過(guò)特殊處理的樣本,在送樣時(shí),務(wù)必請(qǐng)?jiān)跇颖拘畔沃羞M(jìn)行詳細(xì)的備注,以便盡量提高提取的成功率和避免樣本的浪費(fèi)
6.1樣本總量不足、濃度過(guò)低存在風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
6.2降解樣本風(fēng)險(xiǎn)
1)文庫(kù)構(gòu)建失敗
2)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
3)導(dǎo)致數(shù)據(jù)隨機(jī)性異常
4)數(shù)據(jù)質(zhì)量差
5)導(dǎo)致數(shù)據(jù)duplication比例高、隨機(jī)性差
6)導(dǎo)致Small RNA rRNA比例高,影響有效數(shù)據(jù),文庫(kù)片段異常
6.3蛋白或其他雜質(zhì)污染
1)可能影響Small RNA電泳分離,造成切膠不準(zhǔn),影響問(wèn)題質(zhì)量
2)可能影響RNA-seq磁珠分離導(dǎo)致建庫(kù)失敗,或即使達(dá)到上機(jī)要求也可能導(dǎo)致文庫(kù)隨機(jī)性差等問(wèn)題
3)文庫(kù)構(gòu)建失敗
4)文庫(kù)產(chǎn)量低不能上機(jī)測(cè)序或測(cè)序數(shù)據(jù)量不足
6.4目標(biāo)RNA含量低
1)總RNA達(dá)到要求,但由于樣本特異性,small RNA含量低于正常樣本,導(dǎo)致建庫(kù)失敗
2)總RNA達(dá)到要求,但由于處理或組織部位的特異性,mRNA降解或含量低,導(dǎo)致建庫(kù)失敗或者測(cè)序數(shù)據(jù)中rRNA 數(shù)據(jù)比例高
]]>1、基本要求
1.1安全
1)人身安全:現(xiàn)有實(shí)驗(yàn)條件下(采取一定防護(hù)后),樣品對(duì)實(shí)驗(yàn)人員本身無(wú)傷害
2)環(huán)境安全:樣品對(duì)室內(nèi)、室外環(huán)境無(wú)影響(以免因?yàn)椴恍⌒膶?dǎo)致一些活體樣本進(jìn)入外界 環(huán)境造成不良影響)
1.2無(wú)污染
1)植物樣本不得有其它植物的污染,不得有病害,不得有蟲(chóng)害(尤其是一些肉眼不容易發(fā) 現(xiàn)的蟲(chóng)卵等)
2)全血樣品不得引入取血物種本身攜帶的病菌、病毒等潛在污染
1.3依據(jù)“理論”&“實(shí)踐”
1)“理論”:基于各種實(shí)驗(yàn)原理的理論依據(jù)
2)“實(shí)踐”:基于 BMK 本身積累的多物種、多樣品的項(xiàng)目經(jīng)驗(yàn)
1.4送樣說(shuō)明
1)客戶(hù)或銷(xiāo)售人員應(yīng)將樣本的信息詳細(xì)說(shuō)明,所有樣品必須標(biāo)注好關(guān)鍵樣品信息:如物種名 稱(chēng)、樣品名稱(chēng)、到樣日期、是否需要返樣等
2)樣品信息單必須早于或與樣品同時(shí)到達(dá)公司,一則方便樣品中心錄樣,二則方便項(xiàng)目盡快 啟動(dòng)
3)因?yàn)闃悠肥状稳硬蛔恪①|(zhì)量不好或信息單未及時(shí)到位造成項(xiàng)目進(jìn)度延后時(shí)需要由客戶(hù)或 銷(xiāo)售部承擔(dān)相關(guān)責(zé)任(特殊項(xiàng)目除外)
4)因公司內(nèi)部培養(yǎng)條件不能同時(shí)滿(mǎn)足各種物種的生長(zhǎng)需求,因此,送達(dá)活體樣品應(yīng)該盡量是 送到即可進(jìn)行實(shí)驗(yàn)的樣品(量足,質(zhì)好),不建議在公司保存過(guò)長(zhǎng)時(shí)間,防止培養(yǎng)樣本死亡
5)所有需要特殊關(guān)注的樣品,在華開(kāi)任務(wù)單中需要備注相關(guān)信息,并提前郵件通知 Hi-C 相關(guān) 注意事項(xiàng);特殊物種需要書(shū)面告知材料培養(yǎng)條件(光、溫度、水、肥 or 有機(jī)營(yíng)養(yǎng)物等等)
6)生長(zhǎng)狀態(tài)趨于不好的樣品,或一些離體枝條需要提前與實(shí)驗(yàn)溝通,保證到樣后可及時(shí)處理 樣品
1.5法定節(jié)假日期間和周末送樣要求
1)節(jié)假日當(dāng)天及假日前后各一周不建議再到樣, 如遇特殊情況需要節(jié)前一周與實(shí)驗(yàn)平臺(tái)溝通送樣需求
2)周末休息日2 天不建議到樣,如遇特殊情況需要節(jié)前一周與實(shí)驗(yàn)平臺(tái)溝通送樣需求
2、動(dòng)物樣本-全血
2.1新鮮血液
血液采集后加入含 EDTA 或檸檬酸鈉抗凝管中(因肝素鈉抗凝會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),故不 建議用肝素鈉抗凝),輕輕顛倒十次混勻,室溫正立放置,平衡 2 h 后立即送樣,并盡量確 保 24h 內(nèi)運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室
2.2凍存血液
血液采集后加入含 EDTA 或檸檬酸鈉抗凝管中(因肝素鈉抗凝會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),故不 建議用肝素鈉抗凝),輕輕顛倒十次混勻,室溫正立放置,平衡 2 h 后直接液氮速凍,干冰 運(yùn)輸
2.3血液需求量
每一個(gè)樣品,建議送樣 1~2 mL
2.4全血取樣注意事項(xiàng)(防止污染、溶血)
1)取樣前要做好消毒處理:包括取樣部位、取樣器材、取樣者戴的手套等,防止所取血液 樣品被物種本身攜帶的細(xì)菌等污染物污染
2)準(zhǔn)備檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝管(抗凝管有多種規(guī)格)
3)依據(jù)抗凝管的實(shí)際規(guī)格采取全血樣品,比如:10mL 規(guī)格的抗凝管可以取樣 10mL
4) 取完血后,迅速輕柔顛倒混勻全血樣品,保證血液與抗凝劑充分混勻
5)天氣較熱時(shí):含有血液樣品的抗凝管運(yùn)輸時(shí)使用冰袋低溫運(yùn)輸,注意,冰袋不要與抗凝 管直接接觸,以防止血液凍凝;天氣較冷時(shí):含有血液樣品的抗凝管運(yùn)輸時(shí)無(wú)需加冰袋 運(yùn)輸
3、動(dòng)物樣本-組織標(biāo)本
3.1凍存樣品取樣要求
1)應(yīng)保證組織樣品新鮮凍存,保存時(shí)間不要太長(zhǎng)(以?xún)龃鏁r(shí)間 1 個(gè)月為宜)
2)應(yīng)將肌肉表面附著的血液、脂肪、毛皮等非肌肉組織處理干凈
3)直接液氮速凍干冰運(yùn)輸
3.2凍存組織樣品理論用量
組織量 2 g 為佳,最少 1 g;1 g 可滿(mǎn)足 3 個(gè)文庫(kù)構(gòu)建,最低要求至少 0.2 g
4、動(dòng)物樣本-細(xì)胞
4.1取樣要求
需要進(jìn)行甲醛交聯(lián)固定后送樣
4.2細(xì)胞樣品量要求
一般來(lái)講 2*10^6個(gè)細(xì)胞滿(mǎn)足一個(gè) Hi-C 文庫(kù),建議培養(yǎng)到 107 個(gè)細(xì)胞用于固定,以保證 試驗(yàn)的可重復(fù)性, 由于細(xì)胞的數(shù)量可能會(huì)影響 Hi-C 試驗(yàn)的質(zhì)量,因此需要細(xì)胞數(shù)目盡量精確
4.3交聯(lián)細(xì)胞
1) 取 10^7 個(gè)新鮮活細(xì)胞置于 15 mL 離心管中,加入 10 mL 的 cold 1×PBS 搖勻,1000 g, 4℃離心 2 min
2)吸棄上清,每管再次加入 10 mL 的 cold 1×PBS 輕混勻,1000g ,4℃離心 2 min
3)吸棄上清,用 10 mL cold 1 × PBS 重懸沉淀,加入適量(570 μL)37%甲醛(終濃度 2%)混勻,室溫放置 10 min(1-2 min 混勻一次);(注意甲醛需要使用 sigma 等進(jìn)口品 牌,以免影響固定效果,也可以由當(dāng)?shù)劁N(xiāo)售申請(qǐng)實(shí)驗(yàn)室寄送固定試劑)
4)加適量(710 μL)2 M 的甘氨酸(常溫保存)終止反應(yīng)(終濃度 0.125 M),室溫混勻5min,冰上放置15min
5)固定好的細(xì)胞 600 g 4℃ 離心 8 min ,棄上清
6)1 mL cold PBS 重懸沉淀,600g 4℃ 離心 8 min ,去上清
7)液氮速凍干冰運(yùn)輸或-80℃保存
注:做到此步直接液氮速凍,干冰運(yùn)輸,信息單中備注:“細(xì)胞交聯(lián)完成”
5、真菌樣本
5.1凍存樣品—“慢凍快融”或“直接速凍 ”
1) 應(yīng)保證菌體為對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,保存時(shí)間不要太長(zhǎng)(以?xún)龃鏁r(shí)間 1 個(gè)月為宜)
2)直接液氮速凍干冰運(yùn)輸
5.2組織樣品理論用量
組織量 1 g 為佳,最少 0.2 g
6、植物樣本
6.1活體植株
1)幼嫩植株:種子培育的低齡幼苗、組培苗——全部葉片、部分幼嫩莖
2)成熟植株:莖尖組織及靠近莖尖的第 1-2 片幼嫩葉片
3)取樣量:保證每一個(gè)庫(kù)的理論用量 1g
4)其它:特殊貴重活體樣品需要客戶(hù)提供樣品的種植、保存條件,以保證樣品的正常生長(zhǎng)
6.2離體枝條
1)枝條選擇:枝條頂端有待萌發(fā)葉芽,且葉芽周邊有幾片幼葉(到樣后會(huì)選擇葉片進(jìn)行實(shí)驗(yàn));枝條中下端保留部分成熟葉片
2)枝條預(yù)處理:剪斷枝條, 自底端往上約 5 cm 用浸透水的吸水紙包裹好,放入自封袋, 袋中 噴水,填充部分空氣,密封袋口
3)枝條運(yùn)輸: 自封袋放入泡沫箱,箱體內(nèi)側(cè)壁放部分冰袋(保證低溫運(yùn)輸),冰袋與自封袋 間放置泡沫板,防止冰袋積壓樣品或因冰袋與樣品直接接觸導(dǎo)致樣品被凍傷
4)運(yùn)輸時(shí)間:保證 24h內(nèi)到樣,最多不得超過(guò) 3天
5)取樣量:保證每一個(gè)庫(kù)的理論用量1g
6)其它:取“離體枝條”僅限比較難以獲得幼嫩活體植株的項(xiàng)目,如野外采樣、植株過(guò)大等導(dǎo)致的取樣或運(yùn)輸比較困難的項(xiàng)目;離體枝條到樣后如有損傷等將不再用于實(shí)驗(yàn);離體枝條如果保存、運(yùn)輸不善會(huì)存在部分潛在風(fēng)險(xiǎn):即得到的實(shí)驗(yàn)效果可能會(huì)比活體植株檢測(cè)結(jié)果 稍差(理論上的潛在風(fēng)險(xiǎn))
6.3凍存植物組織
6.3.1凍存組織風(fēng)險(xiǎn)
1)植物組織液氮速凍后容易造成破碎,導(dǎo)致后續(xù)固定等操作無(wú)法有效實(shí)施
2)植物組織破碎嚴(yán)重時(shí)會(huì)對(duì)核甚至染色體造成物理機(jī)械損傷
6.3.2取樣要求
1)從植物體上,取下新鮮組織,取材后需用清水將材料表面的灰塵或泥土沖洗干凈,吸干
2)如果組織體積較大,應(yīng)在冰上將組織切成小塊薄片
3)將處理好的組織樣本混合均勻保存于 2mL或更大體積的旋蓋凍存管中,每份植物> 1 g,準(zhǔn)確標(biāo)記樣品名稱(chēng)
4)迅速置于液氮中冷凍至少 5min ,然后轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱中保存
5)為確保實(shí)驗(yàn)的順利,建議樣品備份 1-2 份,植物> 1 g/份,以防部分樣品降解重新取材、制備或送樣
6)應(yīng)保證組織樣品新鮮凍存,保存時(shí)間不要太長(zhǎng)(以?xún)龃鏁r(shí)間 1 個(gè)月為宜)
7)運(yùn)送方式:將凍存管置于密封性好的塑料袋中,用膠布纏到冰袋上,并在泡沫盒中裝入 足量的干冰進(jìn)行運(yùn)輸
6.4其他植物樣本
1)非葉片(活體植株):有常規(guī)提取經(jīng)驗(yàn),須為 DNA 提取率高、黏度低的部位
2)非葉片(離體植株):處理與運(yùn)輸與離體枝條相同,有常規(guī)提取經(jīng)驗(yàn),須為 DNA 提取率高、黏度低的部位
3)取樣量:保證每一個(gè)庫(kù)的理論用量 1 g
4)非葉片樣品適用于葉片難提取的植株或老師的特殊要求,此類(lèi)樣品DNA提取失敗的風(fēng)險(xiǎn)高于葉片樣本,需要銷(xiāo)售與老師交代清楚
6.5植物取樣注意事項(xiàng)
1)建議一次送樣量在 1~4g
2)所有待取的幼嫩組織長(zhǎng)勢(shì)必須正常(無(wú)病蟲(chóng)害、無(wú)營(yíng)養(yǎng)缺失)
3)對(duì)于需要保留莖尖的特殊情況,取樣時(shí)不取莖尖組織,只取緊靠近莖尖的第1-2 片嫩葉
4)因?yàn)橥ǔB阕又参锉缺蛔又参锔y選擇適合的解離液,裸子植物的葉子大多為針形、 線形、鱗形,葉片表面有較厚的角質(zhì)層,細(xì)胞內(nèi)次生代謝物多,這對(duì)提取完整的細(xì)胞核極為不利,因此,選取
萌發(fā)的新鮮幼苗作為材料會(huì)更合適
5)客戶(hù)沒(méi)有條件寄送活體植物樣本時(shí),可以選擇自己固定,由當(dāng)?shù)劁N(xiāo)售像實(shí)驗(yàn)室申請(qǐng)寄送固定試劑 ( β-巰基乙醇需要老師自己準(zhǔn)備)
7、Hi-C交聯(lián)流程
1)配制NIBuffer工作液 1 ,配制好后置于冰上放置
2)取2g新鮮幼嫩組織樣品,用冰水清洗干凈
3)用剪刀將樣品組織剪碎,放置于50mL 離心管中
4)加入上述配制好的NIBuffer 工作液1
5)加入 2 mL 36%甲醛溶液,室溫條件下,旋轉(zhuǎn)雜交爐中反應(yīng) 90 min
6)加入2.5 mL 2M甘氨酸,連續(xù)手搖 5 min終止交聯(lián)反應(yīng)
7)濾掉液體,用滅菌水清洗至無(wú)泡沫為止
8)吸干樣品表面水分,將樣品置于預(yù)冷的50ml離心管中,并將管置于液氮中
9)-80℃保存或干冰寄送
1、生物學(xué)重復(fù)
取樣應(yīng)盡量減少重復(fù)間樣品的差異。盡可能做到重復(fù)在取樣時(shí)間、部位、處理?xiàng)l件等方 面保持一致,不同樣本的性別、年齡盡量相同,否則可能會(huì)影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可重復(fù)性及可信度
每個(gè)處理至少3個(gè)生物學(xué)重復(fù)
2、樣品的保存與運(yùn)輸
簡(jiǎn)單處理并標(biāo)記后,應(yīng)立即浸入液氮中速凍,之后保存于-80℃冰箱,以免實(shí)驗(yàn)操作前 樣品降解的可能性
3、取樣要求
3.1組織樣本
1)獲取組織樣本
A.動(dòng)物:取下新鮮的組織,立即剔除結(jié)締組織和脂肪等雜質(zhì)部分,用預(yù)冷的 1×PBS 溶液漂洗,將組織表面的殘留血液沖洗干凈
B.植物:從植物體上,取下新鮮組織,取材后需用清水將材料表面的灰塵或泥土沖洗干凈,吸干
2)如果組織體積較大,應(yīng)在冰上將組織切成小塊薄片
3)將處理好的組織樣本混合均勻保存于2 mL或更大體積的旋蓋凍存管中 ,每份組 織>50mg ,準(zhǔn)確標(biāo)記樣品名稱(chēng)
4)迅速置于液氮中冷凍至少 5min ,然后轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱中保存
5)為確保實(shí)驗(yàn)的順利,建議樣品備份 1-2 份,組織>50mg/份,以防部分樣品降解重新取材、 制備或送樣
6)運(yùn)送方式:將凍存管置于密封性好的塑料袋中,用膠布纏到冰袋上,并在泡沫盒中裝入 足量的干冰進(jìn)行運(yùn)輸
7)注意事項(xiàng)
A.昆蟲(chóng)類(lèi)樣本建議進(jìn)行饑餓處理后送樣
B.若樣本有微生物污染(細(xì)菌、病毒等),實(shí)驗(yàn)過(guò)程無(wú)法去除,下機(jī)數(shù)據(jù)會(huì)有污染
3.2細(xì)胞樣本
3.2.1貼壁細(xì)胞
3.2.2懸浮細(xì)胞
1)細(xì)胞獲取
A.將貼壁細(xì)胞用移液器緩慢地吹/刮至懸浮狀,或采用胰酶或 EDTA 消化方法制備細(xì)胞懸液
B.確定細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好
2)按照 50萬(wàn)個(gè)細(xì)胞每管進(jìn)行分裝,準(zhǔn)確標(biāo)記后將分裝好的細(xì)胞 4℃、500G 離心 5min。(到公司后解凍, 由我們?cè)偬暨x 5萬(wàn)個(gè)相對(duì)完整的細(xì)胞核進(jìn)行實(shí)驗(yàn))
3)小心吸去全部上清,加入 500 μL 預(yù)冷的 1×PBS 溶液洗滌,4℃ 、500G 離心 5min
4)小心吸去全部液體,加入 1 mL 預(yù)冷的細(xì)胞凍存液,寬口槍頭輕輕吹打細(xì)胞沉淀混勻, 管壁標(biāo)記樣本名稱(chēng),慢速梯度降溫凍存
5)梯度降溫可參考:4 度 10min>負(fù) 20 度 30min>負(fù) 80 度過(guò)夜>液氮凍存
6)將凍存管置于密封性好的塑料袋中,用膠布纏到冰袋上,并在泡沫盒中裝入足量的干冰 進(jìn)行運(yùn)輸
7)為確保實(shí)驗(yàn)的順利,建議樣品備份 1-2 份,50萬(wàn)個(gè)/份,以防部分樣品降解重新取材,制備或送樣
注:若細(xì)胞樣本有支原體污染,實(shí)驗(yàn)過(guò)程無(wú)法去除,下機(jī)數(shù)據(jù)會(huì)有污染
3.3全血樣本
1)新鮮血液:每一個(gè)樣品,建議送樣 1~2 mL 。血液采集后加入含 EDTA 或檸檬酸鈉抗凝管中(因肝 素鈉抗凝會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),故不建議用肝素鈉抗凝),輕輕顛倒十次混勻,4℃正立放置,確保
5天內(nèi)運(yùn)至實(shí)驗(yàn)室
2)凍存血液:每一個(gè)樣品,建議送樣 1~2 mL 。血液采集后加入含 EDTA 或檸檬酸鈉抗凝管中(因肝素鈉抗凝會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),故不建議用肝素鈉抗凝),輕輕顛倒十次混勻,4℃正立放置,平衡
2 h 后直接液氮速凍,干冰運(yùn)輸
3)注意事項(xiàng)
A.取樣前要做好消毒處理:包括取樣部位、取樣器材、取樣者戴的手套等,防止所取血液樣品被物種本身攜帶的細(xì)菌等污染物污染
B.準(zhǔn)備檸檬酸鈉或 EDTA 抗凝管(抗凝管有多種規(guī)格)
C.依據(jù)抗凝管的實(shí)際規(guī)格采取全血樣品,比如:10mL規(guī)格的抗凝管可以取樣 10mL
D.取完血后,迅速輕柔顛倒混勻全血樣品,保證血液與抗凝劑充分混勻
E.天氣較熱時(shí):含有血液樣品的抗凝管運(yùn)輸時(shí)使用冰袋低溫運(yùn)輸,注意,冰袋不要與抗凝 管直接接觸,以防止血液凍凝;天氣較冷時(shí):含有血液樣品的抗凝管運(yùn)輸時(shí)無(wú)需加冰袋運(yùn)輸
]]>劉恒康博士研究方向?yàn)槔每臻g多組學(xué)探究腫瘤細(xì)胞遺傳變異及其與微環(huán)境的相互作用在腫瘤演化過(guò)程中的規(guī)律和機(jī)制。在本次講座中劉博士分享了一篇發(fā)表于Cancer Cell的封面文章,其中百邁客生物為該研究提供了百創(chuàng)S1000空間轉(zhuǎn)錄組測(cè)序服務(wù)。
與以往研究不同的是,這篇文章在研究中同時(shí)納入原發(fā)灶以及侵襲性黑色素瘤,結(jié)合多組學(xué)技術(shù)手段,挖掘腫瘤侵襲的克隆演化規(guī)律的同時(shí),發(fā)現(xiàn)了AM(原位肢端黑色素瘤)的C3分子亞型預(yù)后更差,這與C3亞型微環(huán)境中浸潤(rùn)更多免疫細(xì)胞以及免疫抑制微環(huán)境相關(guān)。其中APOE+/CD163+巨噬細(xì)胞通過(guò)IGF1-IGF1R促進(jìn)了腫瘤細(xì)胞EMT轉(zhuǎn)化,這一發(fā)現(xiàn)也在體外細(xì)胞共培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)、額外的患者隊(duì)列中得到了驗(yàn)證,為臨床評(píng)估黑色素瘤患者預(yù)后提供了新的視角,即肢端型黑色素瘤組織中APOE+CD163+雙陽(yáng)與患者更差預(yù)后相關(guān)。
首期 “一作面對(duì)面” 腫瘤專(zhuān)題講座圓滿(mǎn)收官,前沿干貨精彩紛呈!
百邁客生物 “一作面對(duì)面” 腫瘤專(zhuān)題系列講座將持續(xù)推出肺癌、肝癌、結(jié)直腸癌、胃癌、乳腺癌、宮頸癌、前列腺癌等多癌種專(zhuān)場(chǎng),致力于打造腫瘤醫(yī)學(xué)領(lǐng)域前沿研究的高端分享平臺(tái) —— 聚焦研究思路與成果的深度交流,探索臨床問(wèn)題向科學(xué)研究的轉(zhuǎn)化路徑,解析前沿技術(shù)驅(qū)動(dòng)的認(rèn)知革新,并揭示科研成果的臨床價(jià)值落地邏輯。
誠(chéng)邀腫瘤研究領(lǐng)域?qū)<覍W(xué)者共聚云端
愿思維碰撞出的火花
最終變?yōu)榱一鸱賰舨⊥丛旄V大患者
7月9日19:30
我們下期再會(huì)!
]]>中山大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院李霖鋒教授以“雜草稻的起源與適應(yīng)性進(jìn)化”為題,依托《Nature Communications》發(fā)表的題為”Porous borders at the wild-crop interface promote weed adaptation in Southeast Asia”?的文章,以文章中雜草稻基因組組裝及群體進(jìn)化為基礎(chǔ),延伸介紹了從雜草稻的表性調(diào)研及分類(lèi),馴化過(guò)程中的品系選育,馴化關(guān)鍵基因選擇以及雜草稻適應(yīng)性進(jìn)化研究對(duì)栽培水稻育種的重要作用等,整場(chǎng)演講深入淺出,引起了各位老師的熱烈討論。
北京大學(xué)現(xiàn)代農(nóng)業(yè)研究院陳為凱副研究員陳老師則以“本氏煙草完整基因組揭示其著絲粒復(fù)雜結(jié)構(gòu)及進(jìn)化歷史”為題,詳細(xì)介紹了老師在《Nature Plants》發(fā)表的題為?“The complete genome assembly of Nicotiana benthamiana reveals the genetic and epigenetic landscape of centromeres”?的研究課題,演講內(nèi)容從煙草的T2T基因組組裝開(kāi)始,深入分析了不同物種著絲粒標(biāo)志序列特征并對(duì)其進(jìn)行分類(lèi),整合Chip-seq及甲基化數(shù)據(jù)共同構(gòu)建了本氏煙草著絲粒形成和進(jìn)化的模型,該模型涉及新著絲粒的形成及反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子等方面信息,整場(chǎng)演講內(nèi)容詳盡思路完整,也引發(fā)了各位在場(chǎng)老師的思考。
百邁客生物高級(jí)產(chǎn)品經(jīng)理聶寧寧圍繞兩位學(xué)者研究中涉及的基因組學(xué)與群體進(jìn)化研究相關(guān)組學(xué)工具展開(kāi)深度解析。
這場(chǎng)學(xué)術(shù)盛宴雖已落幕,但其引發(fā)的思考與探索仍在持續(xù)。7月16日14:00,我們將迎來(lái)第二期直播。屆時(shí),將有新的行業(yè)權(quán)威專(zhuān)家匯聚一堂,圍繞作物育種領(lǐng)域的新興技術(shù)、前沿理論等展開(kāi)深入探討,為大家?guī)?lái)更多關(guān)于作物育種的創(chuàng)新思路與解決方案。
請(qǐng)持續(xù)關(guān)注百邁客生物官方消息,讓我們共同期待7月16日再次相聚云端,共探作物育種新前沿!
]]>組份 | 規(guī)格 |
組織固定液 | 8.75ml(開(kāi)封后需添加?26.25ml?無(wú)水乙醇) |
Buffer?Ⅰ | 20ml(開(kāi)封后需添加?20ml?無(wú)水乙醇) |
組織透明液 | 35ml |
BufferⅡ | 40ml |
石蠟 | 35ml |
操作手冊(cè) | 1?份 |
試劑盒常溫運(yùn)輸,常溫保存,有效時(shí)間截止開(kāi)封后 60 天。
植物石蠟包埋試劑盒,是一種在保留 RNA 完整性的同時(shí)又可進(jìn)行石蠟包埋獲得結(jié)構(gòu)完整性 更好的植物切片的試劑盒。目前常用的植物切片方法主要有徒手切片法、石蠟切片法、冷凍 切片法。徒手切片需要新鮮組織,即取即用無(wú)法長(zhǎng)時(shí)間不存組織;冷凍切片法對(duì)于細(xì)胞結(jié)構(gòu) 大含水量較多的組織無(wú)法保證組織結(jié)構(gòu)的完整性;常規(guī)石蠟切片法無(wú)法保證組織 RNA 完整 性,無(wú)法適用于需要長(zhǎng)期保存且對(duì) RNA 有要求的試驗(yàn)。本試劑盒通過(guò)低溫短時(shí)間固定透明, 并采用特定包埋石蠟可在包埋時(shí)有效降低了組織 RNA 降解。
幼莖、主根(木質(zhì)化程度低);莖尖分生組織、花芽;生長(zhǎng)期籽粒(淀粉含量低)、胚珠、 花苞、葉片
Tween20、無(wú)水乙醇、超純水、移液器、離心管、吸頭、0.22um 針頭式過(guò)濾器、真空濃縮儀、 恒溫箱、包埋盒
1 、開(kāi)始前將組織固定液(確定已添加無(wú)水乙醇)吸取 4ml 于 5ml 離心管,放置 4℃預(yù)冷
2 、樣品準(zhǔn)備:用超純水徹底清洗組織表面所有雜質(zhì),去除目標(biāo)區(qū)域組織周?chē)溆嘟M織并將組織修整為 適合包埋大小。(為了石蠟更好滲透組織一般組織取材長(zhǎng)度不超過(guò) 8mm,厚度不超過(guò) 5mm, 直徑不超過(guò) 1cm;若樣本內(nèi)部有空腔需盡可能暴露空腔,例:包埋花苞樣本時(shí)裁去花苞頂端 閉合的花瓣暴露空腔方便石蠟進(jìn)入)
3 、配置 10ml 0.05%Tween 20 ,并進(jìn)行預(yù)冷
4 、將修整好的組織放入 0.05%Tween20 中,室溫孵育 15min。
5 、取出孵育后的組織,將組織表面的試劑用無(wú)塵紙沾干。
6 、將組織放入預(yù)冷的組織固定液中,顛倒混勻,使組織完全浸沒(méi)并平放于 4℃過(guò)夜固定, 固定時(shí)間為 15-18h ,固定液體積需要超出組織體積的兩倍。同時(shí)將石蠟放置于 38.5℃恒溫 箱進(jìn)行溶解。
7 、吸取 4ml Buffer Ⅰ(確定已添加無(wú)水乙醇)置于冰上進(jìn)行預(yù)冷,取出固定后的組織,用無(wú) 塵紙吸取組織表面多余液體,放入預(yù)冷好的過(guò)渡液 1 中,冰上孵育 1h 。同時(shí)將 BufferⅡ至于 38.5℃恒溫箱中溶解。
8 、吸取 4ml 組織透明液置于冰上進(jìn)行預(yù)冷,取出孵育后的組織,用無(wú)塵紙吸取組織表面多 余液體,放入預(yù)冷好的組織透明液中,冰上孵育 1.5h。
*注意:組織在孵育試劑轉(zhuǎn)換的過(guò)程中需快速進(jìn)行,以免組織表面試劑揮發(fā)造成組織表面出現(xiàn)皺縮或風(fēng)干
9 、BufferⅡ顛倒混勻后,取 1.2ml 置于 1.5ml 離心管中,取出孵育后的組織,用無(wú)塵紙吸取組織表面多余液體后將組織放入 BufferⅡ中,將離心管開(kāi)蓋放入真空濃縮儀中進(jìn)行抽真空1.5h。
*注意:若組織放入 BufferⅡ后 ,試劑出現(xiàn)凝固可置于恒溫箱中溶解后再進(jìn)行抽真空操作, 真空濃縮儀溫度 42℃ , 壓力小于 40KPa ,轉(zhuǎn)速 1300-1500rpm。
10 、將溶解好的石蠟顛倒混勻,取出離心后的組織,將組織放置于盛有 1.2ml 石蠟的 1.5ml 離心管中,之后將其放入真空濃縮儀中進(jìn)行抽真空 2h ,間隔 1h 跟換一次新石蠟。
11 、抽真空結(jié)束后取出組織,將石蠟加入包埋盒,并將組織按照切片方向放置,調(diào)整好后放 置于冰上凝固冷凍。
*注意:多個(gè)組織需將組織放置于同一平面,且組織需處于包埋盒中間位置,組織任何邊緣不能靠近包埋盒邊緣 ,以免切片組織破碎。
12 、將已凝固的包埋塊小心放于-20℃ , 冷凍 2h。
13 、將已凝固的包埋塊用錫紙包裹小心保存于-80℃ , 避免劇烈磕碰,劇烈磕碰易導(dǎo)致石蠟 塊出現(xiàn)裂縫。
*注意:從-20 轉(zhuǎn)到-80 或者干冰的時(shí)候,包埋盒的底部一定不要接觸到干冰或者冰箱底面??蓪窈屑芷?,讓其緩慢冷卻 ,快速冷凍石蠟可能會(huì)產(chǎn)生裂紋
1 、固定后組織變色或者部分變色
可能原因:組織固定液造成的組織脫色,不影響后續(xù)包埋可繼續(xù)包埋流程。
2 、石蠟溶解后出現(xiàn)白色團(tuán)塊或未能完全溶解
建議措施: ①升高溶解溫度,待完全溶解后在 38.5℃恒溫。
3 、浸蠟后組織靠中心結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)白色,組織邊緣結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)透明 可能原因:組織浸蠟不完全
建議措施:加長(zhǎng)浸蠟時(shí)間,但不可加長(zhǎng)超過(guò) 1h ,浸蠟時(shí)間影響組織 RNA 完整性。
]]>為了推動(dòng)動(dòng)物腸道微生物的深入研究,2025年6月24日,百邁客生物特邀三位深耕該領(lǐng)域的權(quán)威專(zhuān)家,以動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)為核心,開(kāi)展此次主題學(xué)術(shù)沙龍,圍繞動(dòng)物腸道微生態(tài)調(diào)控、菌群功能解析、宿主互作機(jī)制等熱點(diǎn)議題,帶來(lái)高水準(zhǔn)學(xué)術(shù)報(bào)告。這不僅是一場(chǎng)知識(shí)與思想的盛宴,更是探索動(dòng)物健康養(yǎng)殖、疾病防控新路徑的交流平臺(tái),讓我們共同探討動(dòng)物腸道微生物世界的無(wú)限可能,攜手推動(dòng)學(xué)科發(fā)展與技術(shù)革新!
一、反芻動(dòng)物消化道微生物組互作與功能研究
本次沙龍中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院草原研究所劉孝珍老師探討了反芻動(dòng)物消化道微生物組研究的重要性,并從不同方向展開(kāi):
二、畜禽微生物研究的變與不變
本次沙龍西北農(nóng)林科技大學(xué)武老師對(duì)國(guó)內(nèi)外關(guān)于畜禽微生物組研究工作進(jìn)行了整體梳理,從以下七個(gè)部分展開(kāi):
三、“腸-生殖”軸建立的作用機(jī)制探究
本次沙龍內(nèi)蒙古大學(xué)周揚(yáng)老師介紹了她近幾年的研究成果,基于“腸-生殖”軸建立的相關(guān)作用機(jī)制,進(jìn)一步去開(kāi)發(fā)羊營(yíng)養(yǎng)代謝性疾病的繁殖調(diào)控技術(shù),研發(fā)提高羊精液品質(zhì)的飼料添加劑。
通過(guò)今天的沙龍,我們對(duì)腸道菌群之間的協(xié)同互作,菌群對(duì)代謝的影響機(jī)制等科學(xué)問(wèn)題有了更全面的認(rèn)識(shí),也對(duì)腸道菌群與宿主的互惠共生關(guān)系有了更深層次的理解。本次沙龍圓滿(mǎn)閉幕,我們將持續(xù)打造第五期微生物領(lǐng)域系列學(xué)術(shù)盛宴,屆時(shí)期待與您在科研長(zhǎng)河中激蕩思想,共濺新浪花!
]]>辣椒(Capsicum annuum)是全球最早且廣泛栽培的蔬菜作物之一,其產(chǎn)生的包括辣椒紅素和辣椒素在內(nèi)的多種次生代謝產(chǎn)物在食品,醫(yī)療和軍工業(yè)都具有重要作用。一直以來(lái),對(duì)于辣椒的改良主要依賴(lài)于傳統(tǒng)育種方法。相較于同為茄科作物的番茄,辣椒具有龐大而復(fù)雜的基因組,且其中超過(guò)80%為轉(zhuǎn)座子或重復(fù)序列。研究表明,轉(zhuǎn)座子和重復(fù)序列是轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件的重要來(lái)源,由此暗示了辣椒基因組中含有豐富的順勢(shì)調(diào)控元件以及多樣的轉(zhuǎn)錄調(diào)控方式,而調(diào)控元件的變化是動(dòng)植物進(jìn)化和馴化的主要驅(qū)動(dòng)力之一。
該研究以樟樹(shù)港辣椒為模型,系統(tǒng)揭示了辣椒在全基因組范圍內(nèi)的表觀特征,并在此基礎(chǔ)上推測(cè)包括啟動(dòng)子和增強(qiáng)子在內(nèi)的瞬時(shí)調(diào)控元件。研究發(fā)現(xiàn),辣椒啟動(dòng)子主要由H3K4me3,?H3K27ac和開(kāi)放染色質(zhì)共同修飾,而增強(qiáng)子的特征為開(kāi)放染色質(zhì)。在此基礎(chǔ)上,該研究對(duì)生長(zhǎng)發(fā)育以及脅迫響應(yīng)的調(diào)控元件進(jìn)行了挖掘,并對(duì)部分元件進(jìn)行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。此外,該研究報(bào)道了辣椒基因組基因間區(qū)H3K4me1和H3K27me3共同修飾的區(qū)域,推測(cè)為暫時(shí)未表達(dá)(poised)的調(diào)控元件,其具體分子功能有待驗(yàn)證。
綜上,該研究系統(tǒng)挖掘辣椒基因組中重要的順勢(shì)調(diào)控元件,以及其調(diào)控的靶標(biāo)基因,不僅為基因調(diào)控研究提供了基礎(chǔ),也為通過(guò)靶向遺傳和表觀遺傳操作改良辣椒品種提供了理論支持。
以上內(nèi)容來(lái)源于北京大學(xué)現(xiàn)代農(nóng)業(yè)研究院,侵刪
]]>1.1植物組織:CTAB法
1)液氮研磨樣品,分裝至離心管中
2)向離心管中加入 CTAB,水浴
3)離心后向上清中加入氯仿/異戊醇(24:1),離心
4)向上清中加入異丙醇和乙酸鈉溶液,離心,棄上清
5)加入 75%乙醇,離心,棄上清
6)晾干,加入 TE 溶解 DNA ,保存在-20℃冰箱
1.2動(dòng)物組織:SDS法
1)液氮研磨組織樣,分裝至離心管中
2)加入 SDS 溶液,水浴
3)加入 NaCl 溶液,靜置后離心
4)向上清中加入氯仿/異戊醇(24:1)后離心
5)向上清中加入異丙醇后離心,棄上清
6)加入 75%乙醇,離心,棄上清
7)晾干,加入 TE 溶解 DNA,保存在-20℃冰箱
1.3動(dòng)物血液:Kurabo 試劑盒法
QuickGene DNA whole blood kit S (DB-S),廠家:Kurabo,貨號(hào):40321300101
1.4粗體核酸純化
試劑盒名稱(chēng):QIAGEN Genomic-tip 20/G,廠家:QIAGEN,貨號(hào):10223
試劑盒名稱(chēng):QIAGEN Genomic-tip 100/G,廠家:QIAGEN,貨號(hào):10243
1.5微生物樣本
使用TGuide S96磁珠法土壤/糞便基因組DNA提取試劑盒完成核酸的提取
2.1檢測(cè)方法
1)濃度檢測(cè)
Nanodrop:賽默飛 Thermo ,型號(hào) NANODROP2000
Qubit:invitrogen ,型號(hào)QubitTM3Flurometer
2)完整性檢測(cè)(瓊脂糖凝膠電泳)
電泳儀:廠家:天能 Tanon ,型號(hào) EPS600
電泳槽:廠家:天根生化科技(北京)有限公司,型號(hào):HE- 120
2.2判定標(biāo)準(zhǔn)
1)總量≥2μg(單次建庫(kù))
2)濃度≥50ng/ul
3)體積≥10(ul)
4)OD260/280在1.7-2.2之間,OD260/230在1.7-2.5之間
5)AGE:size≥23K,降解條帶>5K,點(diǎn)樣孔無(wú)或有輕微污染,N/Q在0.9-2.0之間
6)樣本狀態(tài)正常,樣本粘稠、顏色異常、有渾濁或不溶物均不合格
注:特殊物種實(shí)驗(yàn)人員會(huì)根據(jù)經(jīng)驗(yàn)進(jìn)行判斷,具體以檢測(cè)報(bào)告中的判斷結(jié)果為準(zhǔn)
3.1建庫(kù)流程
1) 準(zhǔn)備高質(zhì)量核酸,g-TUBE 管使核酸片段化
2)使用BluePippin進(jìn)行片段篩選
3)使用 NEBNext FFPE DNA Repair Mix 和 NEBNext Ultra II End Repair/dA-Tailing Module 完成核酸片段的損傷修復(fù)和末端修復(fù)加 A
4)使用無(wú)擴(kuò)增條形碼擴(kuò)展試劑盒添加 barcode 序列
5)使用無(wú)擴(kuò)增條形碼擴(kuò)展試劑盒完成測(cè)序接頭的連接
3.2建庫(kù)試劑
1)文庫(kù)構(gòu)建試劑:NEBNext FFPE DNA Repair Mix 貨號(hào) M6630L 廠家 NEB
2)文庫(kù)構(gòu)建試劑:NEBNext Ultra II End Repair/dA-Tailing Module 貨號(hào)E7546L 廠家NEB
3)文庫(kù)構(gòu)建試劑:無(wú)擴(kuò)增條形碼擴(kuò)展試劑盒1-96 貨號(hào)SQK-NBD114.96 廠家Nanopore
3.3建庫(kù)設(shè)備
數(shù)字 3*32PCR 儀 廠家 Appliedbiosystems 儀器規(guī)格 proflex3*32
制冷型程控五段金屬浴 廠家 天根生化科技(北京)有限公司 儀器規(guī)格 OSE-DB-02
4.1上機(jī)操作
1)用測(cè)序芯片制備試劑盒配制 Flow cell Priming mix
2)用測(cè)序輔助擴(kuò)展試劑盒配置上機(jī)文庫(kù)
3)用 PromethION Flow Cells 芯片,在PromethION48測(cè)序儀運(yùn)行MinKnow 軟件,開(kāi)始測(cè)序,默認(rèn)運(yùn)行72 小時(shí)
4.2測(cè)序試劑
測(cè)序芯片制備試劑盒 貨號(hào) EXP-FLP004 廠家 Nanopore
測(cè)序輔助擴(kuò)展試劑盒 貨號(hào) EXP-AUX003 廠家 Naonopore
測(cè)序芯片 PromethION Flow Cell(R10.4.1) 貨號(hào) FLO-PRO114M 廠家 Nanopore
4.3測(cè)序設(shè)備
PromethION48 測(cè)序儀 廠家 Nanopore 儀器規(guī)格 PromethION48
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